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				<journal-title>Acta Agronómica</journal-title>
				<abbrev-journal-title abbrev-type="publisher">Acta Agron.</abbrev-journal-title>
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			<issn pub-type="ppub">0120-2812</issn>
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				<publisher-name>Universidad Nacional de Colombia</publisher-name>
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			<article-id pub-id-type="doi">10.15446/acag.v70n4.84972</article-id>
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					<subject>Articles</subject>
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			<title-group>
				<article-title>Protocolo de propagación vegetativa de Hedeoma teyucuarensis especie medicinal endémica en peligro de extinción</article-title>
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					<trans-title>Vegetative propagation protocol of Hedeoma teyucuarensis endemic medicinal species in danger of extinction</trans-title>
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					<label>1</label>
					<institution content-type="original">Universidad Nacional de Misiones. El dorado, Misiones, Argentina. evelynduarte1982@gmail.com, danielschamne@yahoo.com.ar, ocb2257@gmail.com, fernandoniella@gmail.com, kellerhector@hotmail.com, procha910@gmail.com</institution>
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			<pub-date date-type="pub" publication-format="electronic">
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				<month>03</month>
				<year>2023</year>
			</pub-date>
			<pub-date date-type="collection" publication-format="electronic">
				<season>Oct-Dec</season>
				<year>2021</year>
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			<volume>70</volume>
			<issue>4</issue>
			<fpage>386</fpage>
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				<date date-type="received">
					<day>12</day>
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				<date date-type="accepted">
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					<license-p>Este es un artículo publicado en acceso abierto bajo una licencia Creative Commons</license-p>
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			<abstract>
				<title>Resumen</title>
				<p><italic>Hedeoma teyucuarensis</italic> es una especie microendémica del único fragmento del bioma Cerrado de la Argentina desarrollado sobre areniscas. Se encuentra en peligro crítico dado que es utilizada en medicina popular para combatir los parásitos intestinales. El objetivo del presente estudio es evaluar la factibilidad de obtener plantas madre de <italic>H. teyucuarensis</italic> a partir de estacas, empleando diferentes concentraciones de ácido 1-naftalenacético (ANA) en arena, perlita y corteza de pino. Se cosecharon estacas de plantas ubicadas en su área de distribución natural (San Ignacio, Misiones, Argentina). Posteriormente, del material vegetal cosechado, se obtuvieron estacas apicales y subapicales de un largo de 7 cm. Las bases de estas son sumergidas en una solución de ANA en las dosis 0, 100 y 250 mg.kg<sup>-1</sup>, durante 30 minutos y luego en una solución fúngica por 20 minutos. Las estacas son colocadas en macetas de 200 cm<sup>3</sup>, que contienen como sustrato, arena, perlita y corteza de pino. El mayor porcentaje de enraizamiento se obtiene en las estacas del tratamiento testigo. La concentración de ANA no afecta el porcentaje de enraizamiento, pero si en el número de raíces. Este trabajo ha demostrado que el tipo de estaca como de sustrato utilizado afecta el enraizamiento y por ende la obtención de plantas. Este estudio aporta una metodología de propagación vegetativa para obtener plantas, el cual puede servir para conservar esta especie en peligro.</p>
			</abstract>
			<trans-abstract xml:lang="en">
				<title>Abstract</title>
				<p><italic>Hedeoma teyucuarensis</italic> is a microendemic species of the only fragment of the Cerrado Biome of Argentina developed on sandstones. It is critically endangered because it is used in folk medicine to combat intestinal parasites. The aim of the present study is to evaluate the feasibility of obtaining <italic>H. teyucuarensis</italic> mother plants from cuttings, using different concentrations of 1-naphthaleneacetic acid (NAA) in sand, perlite, and pine bark. Cuttings are harvested from plants located in its natural distribution area (San Ignacio, Misiones, Argentina). Subsequently, apical and subapical cuttings 7 cm long are obtained from the harvested plant material. The bases of these are immersed in a solution of NAA at doses of 0, 100 and 250 mg/kg<sup>-1</sup> for 30 minutes and then in a fungal solution for 20 minutes. The cuttings are placed in 200 cm<sup>3</sup> pots containing sand, perlite, and pine bark as substrate. The highest percentage of rooting is obtained in the cuttings of the control treatment. The concentration of NAA did not affect the rooting percentage but did affect the number of roots. This work has shown that the type of stake and substrate used affects rooting and therefore the obtaining of plants. This study provides a methodology of vegetative propagation to obtain plants, which can be used to conserve this endangered species.</p>
			</trans-abstract>
			<kwd-group xml:lang="es">
				<title>Palabras clave:</title>
				<kwd>Acido1-naftalenacético</kwd>
				<kwd>estacas</kwd>
				<kwd>enraizamiento</kwd>
				<kwd>Lamiaceae</kwd>
				<kwd>propagación vegetativa</kwd>
			</kwd-group>
			<kwd-group xml:lang="en">
				<title>Keywords:</title>
				<kwd>Naphthalene acetic acid</kwd>
				<kwd>cutting</kwd>
				<kwd>rooting</kwd>
				<kwd>Lamiaceae</kwd>
				<kwd>vegetative propagation</kwd>
			</kwd-group>
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	<body>
		<sec sec-type="intro">
			<title>Introducción</title>
			<p><italic>Hedeoma teyucuarensis</italic> es un sufrútice aromático endémico del último relicto de cerrado en la Argentina, conocida comúnmente con el nombre de “mentita”. Es utilizada como aromatizante en bebidas refrescantes, pero también es una especie importante en la medicina popular, ya que a sus raíces se le atribuyen la propiedad de combatir los parásitos intestinales por medio de una infusión obtenida a partir de la decocción de las mismas. (<xref ref-type="bibr" rid="B17">Keller y Tressens, 2016</xref>).</p>
			<p>En la actualidad solo existe registro de una única población de H. teyucuarensis, con tan solo 13 ejemplares, la cual se encuentra en un área menor a 0.1 ha, dentro del sitio conocido como Teyú Cuaré, ubicado en San Ignacio (Misiones-Argentina). La existencia de esta especie endémica en Teyú Cuaré, está asociada a la geología y edafología del lugar debido a la presencia de suelos arenosos, ácidos y altamente drenados, que se presentan únicamente en ese sitio en la provincia de Misiones (<xref ref-type="bibr" rid="B47">Velazco et al., 2018</xref>).</p>
			<p>El uso medicinal de la especie implica la remoción de las raíces y esta modalidad de uso netamente extractiva determinan la pérdida del recurso genético en las poblaciones naturales nativas, ocasionando en este caso, como en otras especies de <italic>Hedeoma</italic>, que se encuentre en peligro de extinción (<xref ref-type="bibr" rid="B19">Lobo-Arias y Medina-Cano, 2009</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B17">Keller y Tressens, 2016</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B10">Díaz- Gabutti <italic>et</italic> al., 2018</xref>). La principal causa de desaparición de plantas y animales es la disminución de las áreas naturales y pérdida de hábitat por la excesiva fragmentación del paisaje debido a las actividades agroindustriales, forestales y construcciones urbanas (<xref ref-type="bibr" rid="B16">Hernández et al., 2009</xref>).</p>
			<p>La población de H. <italic>teyucuarensis</italic> se encuentra ubicada en un área desprotegida de leyes ambientales provinciales o nacionales y con una población agrícola circundante que está en permanente aumento, esto hace que los factores antrópicos se constituyan en una amenaza creciente. Por otro lado, a la fecha, no se cuenta con información acerca de la factibilidad de propagación asexual de la especie, siendo esta, una herramienta clave para generar estrategias complementarias en la conservación <italic>in</italic> situ y ex situ y así evitar su extinción (<xref ref-type="bibr" rid="B16">Hernández et al., 2009</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B17">Keller y Tressens, 2016</xref>).</p>
			<p>La propagación vegetativa es una metodología sencilla de bajo costo que puede contribuir a disminuir y evitar la presión sobre las poblaciones naturales. Asimismo, es una técnica que brinda la posibilidad de multiplicar genotipos selectos y admite un manejo económico productivo en el corto plazo (<xref ref-type="bibr" rid="B6">Cardoso dos Santos et al., 2013</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B12">Dirchwolf y Schroeder, 2015</xref>), permitiendo la conservación del recurso (<xref ref-type="bibr" rid="B15">Feria-Arroyo et al., 2010</xref>) y la transferencia de la técnica a pequeños productores y pueblos originarios.</p>
			<p>Considerando la necesidad de generar estrategias aptas y accesibles para todo productor agrícola, resulta importante desarrollar técnicas de propagación sencillas, factibles de implementarse en la agricultura familiar, basados en los principios de la agricultura ecológica, integrando la producción de alimentos y productos no maderables del monte con la preservación de la biodiversidad. Permitiendo así, la convivencia armónica de especies endémicas del lugar, juntamente con los cultivos de interés económico, logrando de esta manera que el proceso productivo tenga eficiencia, sostenibilidad en el tiempo, y resiliencia (<xref ref-type="bibr" rid="B26">Moreno y Castro, 2018</xref>). En este sentido la propagación vegetativa viene a resolver problemas de costos, accesibilidad, producción y manejo sustentable de un recurso, ya que una de las primeras dificultades del establecimiento de cultivos de especies medicinales, particularmente de las nativas, es la ausencia de material de propagación en cantidad suficiente, para que los productores puedan implantarlas, domesticarlas y lograr así, un uso sostenible del recurso (<xref ref-type="bibr" rid="B37">Scheffer et al., 2005</xref>). Razón por la cual se debe contar con métodos de propagación que permitan obtener plantas en forma rápida y simple como es la propagación por estacas (<xref ref-type="bibr" rid="B12">Dirchwolf y Schroeder, 2015</xref>).</p>
			<p>El presente trabajo plantea como objetivo desarrollar un protocolo de propagación vegetativa de <italic>H. teyucuarensis</italic> empleando la propagación vegetativa, con la finalidad de ser reconvertidas a plantas madre para la remultiplicación o uso en programas de restauración y domesticación de la especie.</p>
		</sec>
		<sec sec-type="materials|methods">
			<title>Materiales y métodos</title>
			<sec>
				<title>Especie de estudio</title>
				<p><italic>Hedeoma teyucuarensis</italic> es una planta subarbustiva de hasta 65 cm de altura cuyos tallos, hojas y flores, presentan indumentos de pelos simples. Sus ramas son erectas y poseen hojas elípticas obovadas de margen entero, sésiles o con un corto peciolo y filotaxis opuesta. El cáliz de las flores es tubular, bilabiadas de color verde mientras que la corola es infundibuliforme blanca con máculas violáceas, las cuales se agrupan en inflorescencias axilares cimosas y el fruto está conformado por clusas. (<xref ref-type="bibr" rid="B17">Keller y Tressens, 2016</xref>).</p>
			</sec>
			<sec>
				<title>Recolección de material vegetal</title>
				<p>Por favor aclarar de cuantas plantas se colectaron estacas, en qué época del año, qué tamaño aproximado tenían las plantas y las estacas.</p>
				<p>Para realizar este estudio se procede a cosechar estacas de aproximadamente 15 cm de longitud de 7 plantas seleccionadas al azar en el sitio Teyú Cuaré (Municipio de San Ignacio, Misiones, Argentina), en el mes de abril (otoño) Las plantas seleccionadas para la cosecha se caracterizan por poseer una altura de 20 y 30 cm y un diámetro de follaje entre 15 y 25 cm. Las estacas inmediatamente después de ser cosechadas son colocadas en agua y en una heladera térmica portátil, para evitar la deshidratación de las mismas durante el traslado hasta el laboratorio de propagación vegetativa (Facultad de Ciencias Forestales-Universidad Nacional de Misiones).</p>
			</sec>
			<sec>
				<title>Evaluación de concentración de fitohormonas.</title>
				<p>Estacas sin ápice de 7 cm de longitud obtenidas del material vegetal cosechado en Teyú Cuaré son utilizadas para realizar una primera evaluación del porcentaje de enraizamiento a través del estudio del efecto del ácido 1-naftalenacético (ANA). Para ello, se realizó un experimento, donde las bases de las estacas son sumergidas en ANA en concentraciones de 100 y 250 mg.kg<sup>-1</sup> y agua destilada (tratamiento testigo) durante 30 minutos y luego una solución fúngica (20g.L<sup>-1</sup>) durante 20 minutos. Las estacas son plantadas en macetas de 200 cm<sup>3</sup> que contienen corteza de pino como sustrato. Estas se mantienen durante 60 días en un invernadero agrícola bajo un sistema de riego automático por microaspersores, a fin de mantener una humedad relativa cercana al 90 %, para evitar la deshidratación de las estacas. Transcurrido ese periodo se realiza la evaluación de las variables, las cuales son: número de brotes, porcentaje de enraizamiento, número de raíces, longitud de raíces. Además se calcula el índice de enraizamiento (IE) de acuerdo con la fórmula de <xref ref-type="bibr" rid="B23">Mancini et al. (2018)</xref>, donde, R es cantidad de raíces y LR longitud promedio de tres raíces. Valores altos del IE expresa muchas raíces de corta longitud, mientras que valores bajos, pocas raíces de mayor longitud. Posteriormente las estacas enraizadas se trasplantan a macetas de 1000 cm<sup>3</sup> que contienen arena y 3 g.cm<sup>-3</sup> de fertilizante de liberación lenta. Las mismas se mantienen en invernáculo y se regaron hasta obtener la cantidad de brotes necesarios para posteriores ensayos.</p>
			</sec>
			<sec>
				<title>Evaluación del efecto combinado de los factores fitohormonas, sustratos y tipo de estacas.</title>
				<p>Las plantas obtenidas en el primer experimento son utilizadas para cosechar estacas apicales y subapicales de 7 cm de largo con cuatro a seis nudos. Estas son empleadas para evaluar el efecto del tipo de sustrato y estacas combinado con distintas concentraciones de ANA sobre la inducción de raíces adventicias. Las bases de las estacas son sumergidas en agua destilada (tratamiento testigo) o en una solución de ANA en las dosis 100 y 250 mg.kg<sup>-1</sup>, durante 30 minutos y luego en una solución fúngica por 20 minutos. Posteriormente son colocadas en macetas de 200 cm<sup>3</sup>, que contenían arena, perlita o corteza de pino compostada y permanecieron en un invernáculo con riego por micro-aspersión y una humedad relativa del 90 % durante 60 días. Las variables analizadas después ese periodo son las mismas que se mencionaron anteriormente.</p>
				<p>Finalizado el ensayo las plantas obtenidas en los distintos tratamientos son trasplantadas a macetas de 1000 cm<sup>3</sup> que contenían arena como sustrato.</p>
				<p>Diseño experimental y análisis estadístico.</p>
				<p>El experimento 1 se desarrolla con un diseño completamente aleatorizado en tanto que el segundo además de estar aleatorizado, los tratamientos presentan una distribución factorial 2 (estacas) X 3 (sustrato) X 3 (dosis de ANA), totalizando 3 tratamientos en el experimento 1 y 18 en el segundo con seis repeticiones cada uno. Los datos son sometidos a un análisis de normalidad mediante el test de Shapiro-Wilk modificado y de homocedasticidad mediante la prueba de Levene. Posteriormente en el primer experimento se procede a realizar un análisis de variancia, mientras que en el segundo se realiza un análisis empleando un modelo lineal generalizado mixto (<xref ref-type="bibr" rid="B41">Solís et al., 2015</xref>). Para determinar diferencias significativas, las medias se comparan a un nivel de 0.05 de probabilidad de error utilizando el test de Tukey para el primer experimento y el DGC para el segundo, para lo cual se utiliza el software INFOSTAT (<xref ref-type="bibr" rid="B11">Di Rienzo et al., 2020</xref>).</p>
			</sec>
		</sec>
		<sec sec-type="results">
			<title>Resultados</title>
			<p>La concentración de ANA utilizada no influye en el porcentaje de enraizamiento y número de brotes, pero sí en el número y longitud de raíces y por ende sobre el IE (<xref ref-type="table" rid="t1">Tabla 1</xref>). En el tratamiento testigo conjuntamente con el que contiene 250 mg.kg<sup>-1</sup> de ANA, se observan los mejores porcentajes de enraizamiento, sin embargo, las diferencias fueron estadísticamente no significativas entre los distintos niveles de concentración (<xref ref-type="table" rid="t1">Tabla 1</xref>). El mayor número de raíces por estaca, longitud promedio de raíz e IE se encuentra en el tratamiento de 250 mg.kg<sup>-1</sup> de ANA presentando diferencias estadísticamente significativas respecto del testigo (<xref ref-type="table" rid="t1">Tabla 1</xref>, <xref ref-type="fig" rid="f1">Figura 1</xref>A). Por otro lado, en el número de brotes, no se observan diferencias estadísticamente significativas entre los tratamientos (<xref ref-type="table" rid="t1">Tabla 1</xref>, <xref ref-type="fig" rid="f1">Figura 1</xref>B).</p>
			<p>
				<fig id="f1">
					<label>Figura 1</label>
					<caption>
						<title>Plantas de H. <italic>teyucuarensis</italic> obtenidas por propagación vegetativa. Estacas subapicales enraizadas después de dos meses en corteza de pino <bold>(A)</bold>, estacas subapicales con brotes en corteza de pino <bold>(B)</bold>, estacas apicales enraizadas después de dos meses en arena <bold>(C)</bold>, estacas brotadas en arena y perlita <bold>(D)</bold>. La barra indica 2 cm.</title>
					</caption>
					<graphic xlink:href="0120-2812-acag-70-04-386-gf1.jpg"/>
				</fig>
			</p>
			<p>
				<table-wrap id="t1">
					<label>Tabla 1</label>
					<caption>
						<title>Efecto de la concentración de ANA sobre el enraizamiento de estacas de H. <italic>teyucuarensis</italic> (promedio ± desvío estándar)</title>
					</caption>
					<graphic xlink:href="0120-2812-acag-70-04-386-gt1.jpg"/>
					<table-wrap-foot>
						<fn id="TFN1">
							<p>Letras distintas indican diferencias significativas entre concentraciones (p &lt; 0.05).</p>
						</fn>
						<fn id="TFN2">
							<p>*Índice de Enraizamiento</p>
						</fn>
					</table-wrap-foot>
				</table-wrap>
			</p>
			<p>En el segundo experimento se observan diferencias estadísticas significativas (p = 0,0001) en las variables de porcentaje de enraizamiento, número de raíces y en el IE, en tanto que en las variables longitud de raíces y número de botes no muestran diferencias significativas (<xref ref-type="table" rid="t2">Tabla 2</xref>). En las estacas tanto apicales como subapicales se induce el desarrollo de raíces adventicias en todos los sustratos y en las distintas concentraciones de ANA (<xref ref-type="table" rid="t2">Tabla 2</xref>).</p>
			<p>
				<table-wrap id="t2">
					<label>Tabla 2</label>
					<caption>
						<title>Efecto del tipo de sustrato, concentración de ANA y tipo de estaca, sobre las variables estudiadas en H. <italic>teyucuarensis</italic> (promedio ± desvío estándar)</title>
					</caption>
					<graphic xlink:href="0120-2812-acag-70-04-386-gt2.jpg"/>
					<table-wrap-foot>
						<fn id="TFN3">
							<p>Letras distintas indican diferencias significativas entre tratamientos (p &lt; 0.05). *Apical **Subapical.</p>
						</fn>
						<fn id="TFN4">
							<p>***Índice de Enraizamiento</p>
						</fn>
					</table-wrap-foot>
				</table-wrap>
			</p>
			<p>En la concentración 100 mg.kg<sup>-1</sup> para el sustrato arena, se observa el mayor porcentaje de enraizamiento en ambos tipos de estacas, aunque sin diferencia significativa con el tratamiento testigo en la estaca apical. Asimismo, el número de raíces es mayor en la estaca apical, mientras que la longitud promedio de las raíces es similar entre estacas. Por lo tanto, se obtuvo un mayor IE en las estacas apicales. Por otro lado, el mayor número de brotes también se observa en las estacas apicales con la concentración 100 mg.kg<sup>-1</sup>(<xref ref-type="table" rid="t2">Tabla 2</xref>
				<xref ref-type="table" rid="t1">1</xref>C).</p>
			<p>La perlita si bien permite un buen desarrollo de raíces de las estacas en el tratamiento testigo y las distintas concentraciones de ANA utilizadas, con 250 mg.kg<sup>-1</sup> de ANA se induce el mayor porcentaje de enraizamiento y principalmente en estaca apical. Sin embargo, no se encuentran diferencias estadísticamente significativas en el número y longitud promedio de raíces entre los distintos tipos de estacas y concentraciones de hormona. Contrariamente, el número de brotes es mayor en la estaca apical tratada con 100 mg.kg<sup>-1</sup> (<xref ref-type="table" rid="t2">Tabla 2</xref>, <xref ref-type="fig" rid="f1">Figura 1</xref>D).</p>
			<p>En el sustrato corteza de pino en la estaca subapical del tratamiento libre de hormona se observa el mayor porcentaje de enraizamiento y número de brotes, no obstante, la cantidad de raíces desarrolladas son menores que en el tratamiento de 250 mg.kg<sup>-1</sup> de ANA (<xref ref-type="table" rid="t2">Tabla 2</xref>).</p>
			<p>En la arena y la perlita se observan la mayor cantidad de tratamientos con porcentajes de enraizamiento superiores al 36.66 ± 19.66 (<xref ref-type="table" rid="t2">Tabla 2</xref>), mientras que en la corteza de pino solo un tratamiento presenta diferencias significativas. Consecuentemente de acuerdo con estos resultados, la arena y la perlita son los sustratos más apropiados para inducir raíces adventicias en las estacas apicales, en tanto que la corteza de pino para las subapicales en un ambiente sin adicción exógena de ANA. En este sentido se demuestra que los factores tipos de estacas y sustratos son más influyentes en la inducción de raíces adventicias que la concentración de ANA, ya que dependiendo del tipo de estaca y sustrato la adición de auxina no manifiesta diferencia respecto de un tratamiento sin auxinas, pero si entre tipo de estacas y sustratos.</p>
		</sec>
		<sec sec-type="discussion">
			<title>Discusión</title>
			<p>Los resultados obtenidos en este estudio demuestran que las estacas de segmentos de tallos de H. <italic>teyucuarensis</italic> no necesitan ser tratadas con ANA para lograr el enraizamiento. Si bien la adición de hormonas para inducir el desarrollo de raíces en estacas es uno de los factores más estudiados en la propagación vegetativa y fue demostrado que la aplicación de auxinas tiene gran efecto sobre este proceso morfogénico en especies de la familia Lamiaceae (<xref ref-type="bibr" rid="B39">Sevik y Guney, 2013</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B35">Saglam et al., 2014</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B40">Shahhoseini et al., 2015</xref>). En este trabajo, al igual que los estudios <xref ref-type="bibr" rid="B9">de Bona et al. (2012)</xref> y <xref ref-type="bibr" rid="B3">Bezerra-Carvalho et al. (2015)</xref>, la incorporación de hormona no es un factor relevante en la inducción de raíces.</p>
			<p>La propagación vegetativa está influenciada por diversos factores como el sustrato, el tipo de estaca (<xref ref-type="bibr" rid="B45">Vásquez et al., 2011</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B12">Dirchwolf y Schroeder, 2015</xref>), la época de recolección de estacas (<xref ref-type="bibr" rid="B44">Uribe et al., 2011</xref>), el manejo de la planta madre (<xref ref-type="bibr" rid="B33">Ramírez y Rocha, 2017</xref>), el tipo y concentración de hormonas (<xref ref-type="bibr" rid="B39">Sevik y Guney, 2013</xref>), entre otros. Algunos de los cuales son analizados en este trabajo y de acuerdo con los resultados obtenidos el sustrato y el tipo de estacas demuestran ser los factores más influyentes en la inducción de raíces de tallos de H. teyucuarensis.</p>
			<p>El sustrato fue uno de los factores que afecta la rizogénesis adventicia de H. teyucuarensis, confirmando lo observado por <xref ref-type="bibr" rid="B42">Soudre <italic>et</italic> al., (2011)</xref> y <xref ref-type="bibr" rid="B13">Doll et al., (2003</xref>) que el tipo de sustrato influye notablemente en este proceso morfogénico.</p>
			<p>Para tener éxito en la propagación vegetativa el sustrato debe cumplir con las exigencias nutricionales de la especie, proporcionar soporte, brindar la humedad y la aireación adecuadas para el desarrollo de las raíces (<xref ref-type="bibr" rid="B30">Olivo y Buduba, 2006</xref>) y ser económico y fácilmente disponible (<xref ref-type="bibr" rid="B42">Soudre <italic>et</italic> al., 2011</xref>). Considerando lo anterior se pueden emplear sustratos de origen orgánico como la corteza de pino (<xref ref-type="bibr" rid="B33">Ramírez y Rocha, 2017</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B14">Duarte et al., 2018</xref>) e inorgánico o inertes como la perlita (<xref ref-type="bibr" rid="B34">Rivera-Rodríguez <italic>et</italic> al., 2016</xref>) y la arena (<xref ref-type="bibr" rid="B7">Carranza-Patiño et al., 2012</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B41">Solís et al., 2015</xref>).</p>
			<p>La arena es uno de los sustratos más eficientes en el enraizamiento de estacas apicales de <italic>H. teyucuarensis,</italic> cuando la dosis de ANA es de 100 mg. kg<sup>-1</sup> o nula, al igual que en <italic>Baillonella toxisperma</italic> Pierre (<xref ref-type="bibr" rid="B27">Mpeck y Atangana, 2007</xref>), Physalis <italic>peruviana</italic> L. (<xref ref-type="bibr" rid="B20">López Acosta et al., 2008</xref>) y <italic>Justicia tinctoria</italic> (Oerst.) D. N. Gibson, Fam. (<xref ref-type="bibr" rid="B41">Solís et al., 2015</xref>). La arena es cotidianamente usada en la propagación vegetativa sola o combinada con otros sustratos (<xref ref-type="bibr" rid="B48">Villa-Castorena et al., 2010</xref>), debido a la textura y al espacio poroso que posee características que facilitan la emisión y respiración de raíces (López Acosta <italic>et</italic> al., 2008; <xref ref-type="bibr" rid="B25">Miranda et al., 2009</xref>).</p>
			<p>La perlita por su parte es un material inerte que también puede utilizarse solo o combinado con otros sustratos para mejorar el drenaje, por poseer menor retención de humedad y mayor aireación que otros sustratos (<xref ref-type="bibr" rid="B18">Latsague-Vidal et al., 2008</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B34">Rivera- Rodríguez <italic>et al.,</italic> 2016</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B5">Candal-Couto, 2017</xref>, p. 144; <xref ref-type="bibr" rid="B28">Naumann et al., 2017</xref>). Esta puede retener agua cuatro veces su peso seco, pero a la vez aporta suficiente consistencia para un óptimo soporte de la estaca y desarrollo de las raíces, lo que lo convierte en un sustrato apropiado para la propagación vegetativa (<xref ref-type="bibr" rid="B32">Quiroga et al., 2013</xref>). A pesar de contar con todos estos aspectos positivos, la perlita fue el sustrato que manifestó los menores porcentajes de enraizamiento y raíces más cortas, exceptuando las estacas apicales de la concentración 250 mg.kg<sup>-1</sup> (<xref ref-type="table" rid="t2">Tabla 2</xref>). Estos resultados son contrarios a los que observaron <xref ref-type="bibr" rid="B8">Cuevas-Cruz et al., (2015)</xref> en <italic>Pinus leiophylla</italic> Schiede ex Schltdl. <italic>et</italic> Cham. y <xref ref-type="bibr" rid="B34">Rivera-Rodríguez <italic>et al.,</italic> (2016)</xref> en P. <italic>patula</italic> Schl. et Cham quienes obtuvieron los mayores porcentajes de enraizamiento en perlita.</p>
			<p>El sustrato corteza de pino en este trabajo contribuye mayormente al proceso de rizogénesis adventicia en las estacas subapicales en el tratamiento testigo y con 250 mg.kg<sup>-1</sup> de ANA. En este sustrato, el agua retenida es mayor que en la arena y la perlita, pero la cantidad de agua disponible para la planta es baja y por lo tanto se necesitan riegos frecuentes y de bajas dosis para logar un sustrato con condiciones de humedad apropiado para el enraizamiento de estacas (<xref ref-type="bibr" rid="B2">Arrieta y Terés, 1993</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B24">Martínez etal., 2006</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B36">Sánchez- Córdova <italic>et al.,</italic> 2008</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B38">Segura-Castruita et al., 2008</xref>). Si bien la corteza de pino puede generar condiciones óptimas de humedad lo cual es importante para mantener la supervivencia de las estacas hasta desarrollar las raíces, la incorporación de corteza de pino en el sustrato de propagación podría afectar negativamente al desarrollo de raíces por la presencia de toxinas y sustancias inhibidoras de crecimiento (<xref ref-type="bibr" rid="B1">Arévalo et al., 2016</xref>).</p>
			<p>La arena y la perlita son sustratos que poseen buen drenaje, pero poca retención (<xref ref-type="bibr" rid="B46">Velasco-Hernández et al., 2004</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B5">Candal-Couto, 2017</xref>, p. 144), características que contribuyen a evitar el exceso de humedad en las macetas, y así disminuir la mortalidad de las estacas. En cambio, la corteza de pino es un sustrato que retiene mayormente la humedad y el drenaje es más lento que otros sustratos (<xref ref-type="bibr" rid="B1">Arévalo et al., 2016</xref>).</p>
			<p>El sustrato utilizado en la propagación vegetativa de H. <italic>teyucuarensis,</italic> tiene mayor influencia en el enraizamiento que la dosis de hormona utilizada tal como lo observaron <xref ref-type="bibr" rid="B42">Soudre <italic>et</italic> al. (2011)</xref> en <italic>Cedrelinga cateniformis</italic> Ducke y <xref ref-type="bibr" rid="B31">Ortiz et al. (2021)</xref> en <italic>Hypericum brasiliense</italic> Choysi.</p>
			<p>El tipo de estaca fue otro de los factores que afecta la rizogénesis adventicia de H. <italic>teyucuarensis,</italic> siendo más eficientes las estacas subapicales en corteza de pino. Esto pudo deberse a que las estacas subapicales son más lignificadas y por lo tanto cuentan con tejidos que poseen paredes secundarias de mayor grosor, lo que podría haber contribuido a una mayor resistencia a la podredumbre, además poseen mayores reservas nutritivas lo que le confiere mayor predisposición al enraizamiento adventicio (<xref ref-type="bibr" rid="B21">Maia et al., 2008</xref>). Resultados similares fueron demostrados por <xref ref-type="bibr" rid="B3">Bezerra- Carvalho <italic>et</italic> al. (2015)</xref> en <italic>Hyptis pectinata</italic> L. quienes observaron que el porcentaje de enraizamiento se incrementó a medida que la estaca que se obtiene es más distante del ápice; no obstante <xref ref-type="bibr" rid="B21">Maia <italic>et al</italic>. (2008)</xref> observan que hay mayor inducción de raíces únicamente en las estacas de sección intermedia de <italic>Hyptis suaveolens</italic> (L.) Poit., <xref ref-type="bibr" rid="B29">Niella et al., (2012)</xref> al contrario obtienen más estacas enraizadas en las secciones apicales de Jatropha <italic>curcas</italic> L. como se observa en este trabajo en el sustrato perlita en la dosis de 250 mg.kg<sup>-1</sup>. Sin embargo, en el sustrato arena en ambos tipos de estacas, los porcentajes de enraizamiento no demarcan diferencias significativas en la concentración 100 mg.kg<sup>-1</sup>, pero <italic>sí</italic> en la cantidad de raíces desarrollas (<xref ref-type="table" rid="t2">Tabla 2</xref>).</p>
			<p>Otra particularidad observada en este trabajo es que la brotación de las estacas apicales en algunos tratamientos es menor que de las subapicales, hecho que ya había sido revelado en otras especies como <italic>Malpighia mexicana</italic> A. Juss. y <italic>Byrsonima crassifolia</italic> (L) H. B. K. (<xref ref-type="bibr" rid="B22">Maldonado Peralta et al., 2017</xref>).</p>
			<p>Siguiendo con los criterios de la domesticación participativa que involucra proporcionar técnicas adecuadas de acuerdo con las condiciones, situaciones y el entorno de los agricultores (<xref ref-type="bibr" rid="B43">Tchoundjeu et al., 2006</xref>), la metodología desarrollada en este trabajo podría ser empleada por los agricultores e integrantes de pueblos originarios, por su simplicidad y de costo relativamente bajo, permitiendo de esta manera alcanzar la domesticación de la especie. Además, los resultados obtenidos en este estudio proporcionan información sobre los principales factores que afectan el enraizamiento de <italic>H. teyucuarensis</italic>, que serían de utilidad a la hora de propagar la especie y así evitar su extinción en el corto plazo.</p>
		</sec>
		<sec sec-type="conclusions">
			<title>Conclusión</title>
			<p>Los resultados de este estudio demuestran que las estacas apicales y subapicales de <italic>H. teyucuarensis</italic> tienen la capacidad de desarrollar raíces adventicias sin la aplicación exógena de auxinas. El tipo de estaca y el sustrato utilizado, es uno de los factores más influyentes en la inducción y desarrollo de raíces. Las estacas apicales en arena y perlita presentaron mayor capacidad de enraizamiento y brotación.</p>
		</sec>
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	<back>
		<ack>
			<title>Agradecimientos</title>
			<p>Los autores agradecen a la Facultad de Ciencias Forestales, por la infraestructura. A la Universidad Nacional de Misiones, por los proyecto aprobados y financiados (16/F177), PIO-CONICET-UNaM (23720160100003C0). Al ingeniero Ricardo Buchwiess.</p>
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			<title>Referencias</title>
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				</mixed-citation>
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					<article-title>Inclusión de musgo (Sphagnum magellanicum Brid.) y fibra de coco como componentes orgánicos del sustrato para almácigos de kiwi (Actinidia deliciosa)</article-title>
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