Publicado

2021-07-27

Micropropagación de Calibanus hookeri (lem.) trel (1911). Una especie amenazada

Micropropagation of Calibanus hookeri (lem.) trel (1911). A threatened species

DOI:

https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v23n1.80873

Palabras clave:

Palabras clave, cultivo in vitro, Nolinaceae, organogénesis (es)
Key words, organogenesis, in vitro culture, Nolinaceae (en)

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La especie Calibanus hookerii perteneciente a la familia Asparagaceae, está registrada en la NOM-059-SEMARNAT-2010 catalogada como planta amenazada. Sus poblaciones naturales se han visto reducidas de manera importante debido a una explotación excesiva y destrucción de su hábitat, por lo que se requiere de métodos de propagación eficaz que aseguren su conservación. La propagación in vitro es una alternativa viable para especies vegetales amenazadas. En la presente investigación se reporta el protocolo para la micropropagación de Calibanus hookerii mediante la germinación de semilla sin testa inoculada en medio MS complementado con 2.5, 5.0 y 7.0 mg L-1 de 6 benciladenina (BA), cinetina (K), 2-isopentil-adenina (2iP) y tidiazuron (TDZ). Las variables a medir fueron porcentaje de germinación, número y longitud de brotes producidos por semilla.

El tratamiento más eficiente fue de 5.0 mg L-1 de BA produciéndose un promedio de 26 brotes por semilla; el tratamiento menos eficaz fue con 2.5 mg L-1 K en el cual solamente se obtuvieron dos brotes por semilla. De las tres concentraciones de 2iP solamente en la concentración de 7 mg. L-1 mostró resultados produciendo 6 brotes por semilla. En lo que respecta a la longitud del brote ningún tratamiento superó al testigo (8.07cm). La eficiencia la germinación in vitro fue de 56-97%.

 

The species Calibanus hookerii belonging to the family Aspagaceae is registered in the NOM-059-SEMARNAT-2010 cataloged in danger of extinction and therefore is necessary of propagation methods that assure its conservation and its propagation. In vitro propagation is a viable alternative for endangered plant species. The present investigation reports the protocol for the micropropagation of Calibanus hookerii. This was achieved by seed germination without test in MS medium supplemented with 2.5, 5.0 and 7.0 mg L-1 of 6-benzyladenine (BA), kinetin (K), 2-isopentyl-adenine (2iP) and tidiazuron (TDZ). The variables to be measured were percentage of germination, number and length of shoots produced by seed. The most efficient treatment was 5 mg L-1 of BA producing an average of 26 shoots per seed, the worst treatment was with 2.5 K only produced 2 shoots per seed, of the four cytokinins used 2ip treatment in only one study of the Performed showed results (7 mg L-1) producing 6 shoots per seed. Regarding the length of the shoot, no treatment exceeded the control (8.07cm). Finally, in vitro germination was high (56-97%) in all treatments.

 

 

Referencias

Acebedo, M.M.; Liñán, J.; Lavee, S. y Troncoso, A. 1997. In vitro germination of embryos for speeding up seedling development in olive breeding programmes. Scientia Horticulturae 69. Pp 207 DOI: https://doi.org/10.1016/S0304-4238(97)00004-6

Baskin C.C. y Baskin J.M. 1998. Seeds: Ecology, Biogeography, and Evolution of Dormancy and Germination. Annals of Botany, Volume 86, Issue 3, September 2000, Pages 705–707 DOI: https://doi.org/10.1006/anbo.2000.1238

Darnell J, Lodish H, Baltimore D. Biología celular y molecular. 5 ed. Barcelona: Editorial Labor S.A.; 1988. p. 255-256.

Broschat T.K. 1998. Endocarp removal enhances Butia capitata (Mart.) Becc. (pindo palm) seed germination. HortTechnology. American Society for Horticultural Science, 8 (4): 586-58 DOI: https://doi.org/10.21273/HORTTECH.8.4.586

Cantos, M; Cuervas, J.; Zarate, R y Troncoso, A. 1998. Embryo rescue and development of Juniperus oxycedrus subsp. oxycedrus and macrocarpa. Seed Science and Technology, 26:193-198.

Castañeda Nava J. J y Santacruz Ruvalcaba F. 2008. Propagación masiva in vitro de pata de elefante (Beaucarnea recurvata Lemaire (Nolinaceae)). Avances en la investigación cientifica en el CUCBA.

Castillo De, M.G. y Barceló, M.A. 2004. Cultivo horizontal de segmentos uninodales de plantas de Prosopis alba Griseb. (Leguminosae). Misiones, Ar.

Domínguez- Rosales M. S.; Alpuche-Solís A. G.; Vasco-Méndez N. L y Pérez Molphe Balch E. 2008. Efecto de citocininas en la propagación in vitro de agaves mexicanos. Rev. Fitotec. Mex. Vol. 31 (4): 317 – 322 DOI: https://doi.org/10.35196/rfm.2008.4.317

Guillén S; Martínez-Palacios A y Martínez H y Martínez-Ávalos J. G. 2015. Organogénesis y embriogénesis somática de Beaucarnea inermis (asparagaceae), una especie amenazada del noreste de México Botanical Sciences 93 (2): 1-10. DOI: https://doi.org/10.17129/botsci.129

Gioanetto, F. y Franco J.E. 2004. Usos medicinales y etnobotánicos de las Agavaceae y Nolinaceae en México y Centroamérica. In: Simposio Internacional sobre Agavaceae y Nolinaceae. Mérida, Yucatán. http://www.cicy.mx/eventos/ agaves/resumen.pdf. Pp 6-7

Hernández S. L. 1992. Una especie nueva de Beaucarnea (Nolinaceae). Acta Botánica Mexicana.18: 25-29. DOI: https://doi.org/10.21829/abm18.1992.641

Huetteman C. A. y Preece J.E. 1993. Thidiazuron: a potent cytkinin for woody plant tissue culture. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 33:105-119. DOI: https://doi.org/10.1007/BF01983223

López M.L. 1986. Esfuerzo reproductivo y sobrevivencia de Nolina parviflora (Liliaceae) en la zona semiárida Poblano-Veracruzana. Tesis de Maestría Colegio de Postgraduados. Chapingo, Texcoco, Edo. de Méx., p. 89.

Lu C. Y. 1993. The use of thidiazuron in tissue culture. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant. 29: 92-96. https://link.springer.com/article/10.1007/BF02632259 DOI: https://doi.org/10.1007/BF02632259

Matthys-Rochon E; Piola,F; Le-Deunff,E; Mol,R y Dumas,C. 1998. In vitro development of maize immature embryos: a tool for embryogenesis analysis. Jexp bot. Oxford : Oxford University Press. 49 (322):839-845. DOI: https://doi.org/10.1093/jxb/49.322.839

Murashige y Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue culture. Physiologia Plantarum, 15: 473-479. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x

NORMA Oficial Mexicana NOM-059-SEMARNAT-2010, Protección ambiental-Especies nativas de México de flora y fauna silvestres-Categorías de riesgo y especificaciones para su inclusión, exclusión o cambio-Lista de especies en riesgo.

Osorio-Rosales M.L. y Mata-Rosas M. 2005. Micropropagation of endemic and endangered Mexican species of ponytail palms. HortScience 40:1481-1484. DOI: https://doi.org/10.21273/HORTSCI.40.5.1481

Pence V. C. 2011. Evaluating costs for the in vitro propagation and preservation of endangered plants. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant, 47: 176-187. DOI DOI: https://doi.org/10.1007/s11627-010-9323-6

Poinar, H. N., Kuch, M., Sobolik, K. D., Barnes, I., Stankiewiczi, A. B., Kuder, T., Spaulding, W. G., Bryant, V. M., Cooper A., Pääbo, S. 2001. A molecular analysis of dietary diversity for three archaic Native Americans. DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.061014798

Ranal, M.A. y Garcia de Santana, D. 2006. How and why to measure the germination process. Rev. Brasil. Bot. 29(1): 1-11. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-84042006000100002

Reyes Silva, Alberto Isaac, Morales Muñoz, Carlos Francisco, Pérez Reyes, Martha Evelia, Pérez Molphe Balch, Eugenio 2013 Propagación in vitro de nolináceas mexicanas. Investigación y Ciencia [en linea] 2013, 21 (Mayo-Agosto)

SAS Institute. 2000. Statistic and Graphics Guide. Version 9. North Carolina, U.S.A

Sarasan, V, Cripps, R., Ramsay, MM., Atherton, C.,y McMichen, M. 2006. Conservation in vitro of threatened plants–progress in the past decade. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant 42 (3), 206-214. DOI: https://doi.org/10.1079/IVP2006769

Sarasan, V. 2010. Importance of in vitro technology to future conservation programmes worldwide.Kew Bulletin 65 (4), 549 DOI: https://doi.org/10.1007/s12225-011-9250-7

Strnad M. 1997. The aromatic cytokinins. Physiologia Plantarum. 101: 674-688.Tropical DOI: https://doi.org/10.1034/j.1399-3054.1997.1010403.x

Vadillo P.M del C. 2012. Organogenesis y regeneración de Beaucarnea compacta L. y Beaucarnea purpusii Rose, especies endémicas amenazadas. Tesis de Maestria. Universidad Autónoma de Querétaro. Octubre. p. 38.

Vázquez, S. Q. 2001. Combinación y concentración de reguladores de crecimiento para enraizamiento de sotol (Dasylirion leiophyllum Engelm ex Trelease) in vitro. Tesis licenciatura. Facultad de Ciencias Agrícolas y Forestales, UACH. Delicias, Chihuahua.

Cómo citar

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Núñez Coronado, C., González Rosas, H. y Fernandez-Pavia, Y. L. (2021). Micropropagación de Calibanus hookeri (lem.) trel (1911). Una especie amenazada. Revista Colombiana de Biotecnología, 23(1), 46–54. https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v23n1.80873

ACM

[1]
Núñez Coronado, C., González Rosas, H. y Fernandez-Pavia, Y.L. 2021. Micropropagación de Calibanus hookeri (lem.) trel (1911). Una especie amenazada. Revista Colombiana de Biotecnología. 23, 1 (jun. 2021), 46–54. DOI:https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v23n1.80873.

ACS

(1)
Núñez Coronado, C.; González Rosas, H.; Fernandez-Pavia, Y. L. Micropropagación de Calibanus hookeri (lem.) trel (1911). Una especie amenazada. Rev. colomb. biotecnol. 2021, 23, 46-54.

ABNT

NÚÑEZ CORONADO, C.; GONZÁLEZ ROSAS, H.; FERNANDEZ-PAVIA, Y. L. Micropropagación de Calibanus hookeri (lem.) trel (1911). Una especie amenazada. Revista Colombiana de Biotecnología, [S. l.], v. 23, n. 1, p. 46–54, 2021. DOI: 10.15446/rev.colomb.biote.v23n1.80873. Disponível em: https://revistas.unal.edu.co/index.php/biotecnologia/article/view/80873. Acesso em: 12 jul. 2024.

Chicago

Núñez Coronado, Cesar, Héctor González Rosas, y Yolanda Leticia Fernandez-Pavia. 2021. «Micropropagación de Calibanus hookeri (lem.) trel (1911). Una especie amenazada». Revista Colombiana De Biotecnología 23 (1):46-54. https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v23n1.80873.

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Núñez Coronado, C., González Rosas, H. y Fernandez-Pavia, Y. L. (2021) «Micropropagación de Calibanus hookeri (lem.) trel (1911). Una especie amenazada», Revista Colombiana de Biotecnología, 23(1), pp. 46–54. doi: 10.15446/rev.colomb.biote.v23n1.80873.

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C. Núñez Coronado, H. González Rosas, y Y. L. Fernandez-Pavia, «Micropropagación de Calibanus hookeri (lem.) trel (1911). Una especie amenazada», Rev. colomb. biotecnol., vol. 23, n.º 1, pp. 46–54, jun. 2021.

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Núñez Coronado, C., H. González Rosas, y Y. L. Fernandez-Pavia. «Micropropagación de Calibanus hookeri (lem.) trel (1911). Una especie amenazada». Revista Colombiana de Biotecnología, vol. 23, n.º 1, junio de 2021, pp. 46-54, doi:10.15446/rev.colomb.biote.v23n1.80873.

Turabian

Núñez Coronado, Cesar, Héctor González Rosas, y Yolanda Leticia Fernandez-Pavia. «Micropropagación de Calibanus hookeri (lem.) trel (1911). Una especie amenazada». Revista Colombiana de Biotecnología 23, no. 1 (junio 1, 2021): 46–54. Accedido julio 12, 2024. https://revistas.unal.edu.co/index.php/biotecnologia/article/view/80873.

Vancouver

1.
Núñez Coronado C, González Rosas H, Fernandez-Pavia YL. Micropropagación de Calibanus hookeri (lem.) trel (1911). Una especie amenazada. Rev. colomb. biotecnol. [Internet]. 1 de junio de 2021 [citado 12 de julio de 2024];23(1):46-54. Disponible en: https://revistas.unal.edu.co/index.php/biotecnologia/article/view/80873

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1. María del Rosario Chávez-Muñoz, Gregorio Arellano-Ostoa, Yolanda Leticia Fernández Pavía, María de los Ángeles Rodríguez-Elizalde, Eulalia Edith Villavicencio-Gutiérrez, Hector González Rosas. (2023). Micropropagación y enraizamiento ex vitro de Beaucarnea hookeri (LEM.) Baker. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 14(7), p.e3223. https://doi.org/10.29312/remexca.v14i7.3223.

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