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Rizospheric Microbiota of Espeletia spp. from Santa Inés and Frontino-Urrao Paramos in Antioquia, Colombia
Palabras clave:
Espeletia spp., microbiota, páramos, rizósfera, suelo (es)Descargas
The frailejón (Espeletia spp.) is the emblematic shrub of the paramo. This is an important ecosystem because they are sources of water and organic matter, and are inhabited by a high number of endemic biological species. Considering the importance of the microbiota in soil structure and nutrients availability to support plant growth, we assessed the cultivable microbial populations in Espeletia spp. rhizosphere in Santa Inés and Frontino-Urrao paramos, including functional groups with important role in cycling nutrients. The soil pH was strongly acid in both sites and the organic matter and nitrogen contents were highest in Frontino-Urrao soil. Nevertheless, the microbial abundance was similar in these sites except the content of endospore-forming bacteria, which was 3.8 fold large in Frontino-Urrao. Phosphate solubilizing and cellulolytic microorganisms were found in both sites. Those microorganisms would be used for soil restoration processes in paramos degraded by mining, livestock or agriculture.
MICROBIOTA RIZOSFÉRICA DE Espeletia spp. DE LOS PÁRAMOS DE SANTA INÉS Y DE FRONTINO-URRAO EN ANTIOQUIA, COLOMBIA
El frailejón cuyo nombre científico es Espeletia spp., es considerado el arbusto emblema de los páramos, un ecosistema de importancia debido a que son fuente de agua y de materia orgánica, donde se han registrado un alto número de especies biológicas endémicas. Considerando la relevancia de la microbiota en la estructuración del suelo y disponibilización de nutrientes como soporte para el crecimiento vegetal se determinaron las poblaciones microbianas cultivables de importancia funcional como dinamizadora de nutrientes en el suelo rizosférico de Espeletia spp. en el páramo de Santa Inés y en el de Frontino-Urrao en Antioquia. Los suelos se caracterizaron por ser ácidos y en el páramo de Frontino-Urrao se reportaron los mayores contenidos de materia orgánica y nitrógeno. La biomasa microbiana fue similar en los dos páramos y se registró únicamente variación en el contenido de bacterias formadoras de endospora, que superaron en Frontino-Urrao 3,8 veces el contenido respecto al de Santa Inés. En ambos páramos se reportaron bacterias y hongos solubilizadores de fosfato y degradadores de celulosa que pueden ser empleados en procesos de restauración de suelos paramunos degradados por la minería, la ganadería o la agricultura.
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Citas
Arias E, Piñeros P. Aislamiento e identificación de hongos filamentosos demuestras de suelo de los Páramos de Guasca y Cruz Verde (Tesis de pregrado). Bogotá: Pontificia Universidad Javeriana; 2008. 204 p.
Bardgett RD, Mcalister E. The measurement of soil fungal:bacterial biomass ratios as an indicator of ecosystem self-regulation in temperate meadow grasslands. Biol Fertil Soils.1999;29(3):282–290. Doi: 10.1007/s003740050554
Benavides GD, Hermida AM. Aislamiento e identificación de flora bacteriana nativa de los páramos Cruz Verde y Guasca (Cundinamarca) (Tesis de pregrado). Bogotá: Pontificia Universidad Javeriana; 2008. 118 p.
Bernal E, Celis S, Galindez X, Moratto CJ, Garcia D. Microflora cultivable y endomicorrizas obtenidas en hojarasca de bosque (Páramo Guerrero - Finca Puente de Tierra) Zipaquirá, Colombia. Acta biol Colomb. 2006;11(2):125-130.
Brandes-Ammann A, Kölle L, Brandl H. Detection of bacterial endospores in soil by terbium fluorescence. Int J Microbiol. 2011;2011:1-5. Doi:10.1155/2011/435281.
Chitiva A, Torrenegra R, Cabrera C, Díaz N, Pineda V. Contribución al estudio de microhongos filamentosos en los ecosistemas Páramo de Guasca y El Tablazo. Estudio preliminar de mohos de páramos colombianos. Bogotá: Pontificia Universidad Javeriana; 2007.
Chu H, Fierer N, Lauber C, Caporaso J, Knight R, Grogan P. Soil bacterial diversity in the Arctic is not fundamentally different from that found in other biomes. Environ Microbiol. 2010;12(11):2998–3006. Doi:10.1111/j.1462-2920.2010.02277.x.
Cruz-Martínez K, Suttle KB, Brodie EL, Power ME, Andersen GL, Banfield JF. Despite strong seasonal responses, soil microbial consortia are more resilient to long-term changes in rainfall than overlying grassland. ISME J. 2009;3:738-744. Doi:10.1038/ismej.2009.16.
Cuatrecasas J. Aspectos de la vegetación natural de Colombia. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas Físicas y Naturales. 1958;10(40):221-268.
Díaz-Granados M, Navarrete J, Suárez T. Páramos hidrosistemas sensibles. Revista de Ingeniería. 2005;22:64-75.
Djukic I, Zehetner F, Mentler A, Gerzabek M. Microbial community composition and activity in different Alpine vegetation zones. Soil Biol Biochem. 2010;42(2):155-161. Doi:10.1016/j.soilbio.2009.10.006.
Earl AM, Losick R, Kolter R. Ecology and genomics of Bacillus subtilis. Trends Microbiol. 2008;16(6):269. Doi:10.1016/j.tim.2008.03.004.
Ellis RJ. Artificial soil microcosms: a tool for studying microbial autecology under controlled conditions. J Microbiol Methods. 2004;56(2):287-290.
Kim WI, Kim SN, Ryu KY, Park CS. Genetic diversity of cultivable plant growth-promoting rhizobacteria in Korea. J Microbiol Biotechn. 2011;21(8):777-790.
Koch AL, editor. Growth measurement. En: Gerhardt P. Methodology for general and molecular bacteriology. Washington; 1994. p. 248.
Kumar B, Narula M. Solubilization of inorganic phosphates and growth emergente of wheat as affected by Azotobacter chroococum mutans. Biol Fertil Soils. 1999;28:301-305.
Lyngwi N, Koijam K, Sharma D, Joshi R. Cultivable bacterial diversity along the altitudinal zonation and vegetation range of tropical Eastern Himalaya. Rev Biol Trop. 2013; 61(1):467-490.
Mander C, Wakelin S, Young S, Condron L, O’Callaghan M. Incidence and diversity of phosphate-solubilizing bacteria are linked to phosphorus status in grassland soils. Soil Biol Biochem. 2012;44(1):93-101. Doi:10.1016/j.soilbio.2011.09.009.
Montaña JS, Jimenez DJ, Hernández M, Ángel T, Baena S. Taxonomic and functional assignment of cloned sequences from high Andean forest soil metagenome. Antonie van Leeuwenhoek. 2011;101:205-215.
Morales J, Estévez J. El páramo ¿Ecosistema en vía de extinción? Revista Luna Azul. 2006;22:1-13.
Moratto C, Martínez LJ, Valencia H, Sánchez J. Efecto del uso del suelo sobre hongos solubilizadores de fosfato y bacterias diazotróficas en el páramo de Guerrero (Cundinamarca). Agronomía Colombiana. 2005;23(2):299-309.
Otajevwo FD, Aluyi H. Cultural conditions necessary for optimal cellulase yield by cellulolytic bacterial organisms as they relate to residual sugars released in broth medium. Modern Applied Science. 2011;5(3):141-151. Doi:10.5539/mas.v5n3p141.
Pedraza-Peñalosa P, Betancur J, Franco P. Chisacá, un recorrido por los páramos Andinos. Instituto de Ciencias Naturales e Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. Bogotá; 2004. p. 340.
Rangel JO. La región de vida paramuna y franja aledaña en Colombia. In: Rangel JO, editor. Colombia Diversidad Biótica III. La región de vida paramuna de Colombia. Universidad Nacional de Colombia. Bogotá. Colombia; 2000. p. 1-24.
Sharma S, Kumar V, Tripathi RB. Isolation of phosphate solubilizing microorganism (PSMs) from soil. J Microbiol Biotech Res. 2011;1(2):90-95.
Spain A, Krumholz L, Elshahed M. Abundance, composition, diversity and novelty of soil Proteobacteria. ISME J. 2009;3:992-1000. Doi:10.1038/ismej.2009.43.
Waring BG, Weintraub SR, Sinsabaugh RL. Ecoenzymatic stoichiometry of microbial nutrient acquisition in tropical soils. Biogeochemistry. 2014;117(1):101-113. Doi: 10.1007/s10533-013-9849-x
Yergeau E, Sanschagrin S, Maynard C, St-Arnaud M, Greer C. Microbial expression profiles in the rhizosphere of willows depend on soil contamination. ISME J. 2014;8:344-358. Doi:10.1038/ismej.2013.163.
Zhang B, Liang C, He H, Zhang X. Variations in soil microbial communities and residues along an altitude gradient on the northern slope of Changbai Mountain, China. PLoS ONE. 2013;8(6):e66184. Doi:10.1371/journal.pone.0066184.
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