Comparative growth and biochemical composition of four strains of Nostoc and Anabaena (Cyanobacteria, Nostocales) in relation to sodium nitrate
Comparación del crecimiento y Composición Bioquímica de cuatro cepas de Nostoc y Anabaena (Cyanobacteria, Nostocales) en relación con el nitrato de sodio
DOI:
https://doi.org/10.15446/abc.v21n2.48883Palabras clave:
Anabaena, biochemical composition, biomass, culture, nitrate, Nostoc, biomasa, composición bioquímica, cultivo, nitrato. (en)cultivo, Anabaena, nitrato, Nostoc, biomasa, composición bioquímica (es)
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Nitrogen concentration is an essential parameter in cyanobacterial cultures to produce enriched biomass with biotechnological purposes. Growth and biochemical composition of Nostoc LAUN0015, Nostoc UAM206, Anabaena sp.1 and Anabaena sp.2 were compared at 0, 4.25, 8.5 and 17 mM NaNO3. Cultures under laboratory conditions were maintained for 30 days at a volume of 500 mL. Anabaena sp.1 yielded the highest value of dry mass of 0.26 ± 2.49 mg mL-1 at 8.5 mM NaNO3. For chlorophyll, phycocyanin and phycoerythrin, maximum values were achieved at 17 mM NaNO3 with 18.09 ± 1.74, 102.90 ± 6.73 and 53.47 ± 2.40 μg mL-1, respectively. Nostoc LAUN0015 produced its maximum value of protein 644.86 ± 19.77 μg mL-1, and 890 mg mL-1 of carbohydrates in the absence of nitrogen. This comparative study shows that the most efficient strain for the production of protein, carbohydrates and lipids in diazotrophic conditions corresponded to Nostoc LAUN0015. However, Anabaena sp.1 and Anabaena sp.2 required high nitrogen concentrations to achieve higher values of metabolites, comparing with Nostoc strains. Nitrogen dependence for the production of pigments and high protein production in strains of Anabaena and in diazotrophic conditions for Nostoc was demonstrated. Nostoc can be cultured under nitrogen deficiency and Anabaena in sufficiency, for biomass production enriched with proteins and carbohydrates.
La concentración de nitrógeno constituye un parámetro esencial en cultivos de cianobacterias para la producción de biomasa enriquecida con fines biotecnológicos. Se comparó el crecimiento y composición bioquímica de las cepas Nostoc LAUN0015, Nostoc UAM206, Anabaena sp.1 y Anabaena sp.2 a 0, 4,25; 8,5 y 17 mM NaNO3. Los cultivos en condiciones de laboratorio fueron mantenidos durante 30 días a un volumen de 500 mL. En masa seca, Anabaena sp.1 obtuvo el mayor valor, con 2,49 ± 0,26 mg mL-1 a 8,5 mM NaNO3. Para clorofila, ficocianina y ficoeritrina, los máximos se alcanzaron a 17 mM NaNO3 en Anabaena sp.1, con 18,09 ± 1,74; 102,90 ± 6,73 y 53,47 ± 2,40 μg mL-1, respectivamente. Nostoc LAUN0015 produjo su máximo valor de proteínas de 644,86 ±19,77μg mL-1, y alrededor de 890 μg mL-1 de carbohidratos en ausencia de nitrógeno. El estudio comparativo indica que la cepa más eficiente para la producción de proteínas, carbohidratos y lípidos, en condiciones diazotróficas, correspondió a Nostoc LAUN0015. En cambio, las cepas de Anabaena sp.1 y sp.2 requieren de elevadas concentraciones de nitrógeno para alcanzar los mayores valores de metabolitos, respecto a las cepas de Nostoc. Se demuestra la dependencia de nitrógeno para la producción de los pigmentos y la alta producción proteica en las cepas de Anabaena y en condiciones diazotróficas para Nostoc. Esta última puede ser cultivada bajo una deficiencia de nitrógeno y Anabaena con suficiencia para la producción masiva de biomasa enriquecida con proteínas y carbohidratos.
Referencias
Acien F, Fernandez J, Molina-Grima E. Economics of microalgae biomass production. In: Pandey A, Lee D, Chisti Y, Soccol C, editors. Biofuels from alga. Oxford, UK: Elsevier; 2014. p. 313-325.
Arias Peñaranda M, Martínez Rondán A, Cañizares Villanueva R. Producción de biodiesel a partir de microalgas: Parámetros del cultivo que afectan la producción de lípidos. Acta biol Colomb. 2013;18(1):43-68.
Baier K, Nicklisch S, Grundner C, Reinecke J, Lockau W. Expression of two nblA-homologous genes is required for phycobilisome degradation in nitrogen-starved Synechocystis sp. PCC6803. FEMS Microbiol Lett. 2001;195(1):35-39. Doi:10.1111/j.1574-6968.2001.tb10494.x.
Billi D, Grilli M. Effects of nitrogen limitation and starvation on Chroococcidiopsis sp. (Chroococcales). New Phytol. 1996;133(4):563-571. Doi:10.1111/j.1469-8137.1996.tb01925.x.
Canto de Loura I, Dubacq J, Thomas J. The effect of nitrogen deficiency on pigments and lipids of cyanobacteria. Plant Physiol. 1987;83(4):838-843. Doi: 10.1104/pp.83.4.838.
Colla L, Oliveira C, Reichert C, Vieira Costa J. Production of biomass and nutraceutical compounds by Spirulina platensis under different temperature and nitrogen regimes. Biores Technol. 2007;98(7):1489-1493. Doi:10.1016/j.biortech.2005.09.030.
Cunningham S, Joshi L. Algal Biotechnology: An Emerging Resource with Diverse Application and Potential. In: Kole C, Michler C, Abbott A, Hall T, editors. Transgenic Crop Plants, Vol. 1: Principles and Development. Berlin and Heidelberg, Germany: Verlag-Springer; 2010. p. 343-357. Doi:10.1007/978-3-642-04812-8_9.
De Philippis R, Margheri M, Materassi R, Vincenzini M. Potential of unicellular cyanobacteria from saline environments as exopolysaccharide producers. Appl Environ Microbiol. 1998;64(3):1130-1132.
De Philippis R, Vincenzini M. Exocellular polysaccharides from cyanobacteria and their possible applications. FEMS Microbiol Rev. 1998;22(3):151-175. Doi: 10.1111/j.1574-6976.1998.tb00365.x.
Foy R. The phycocyanin to chlorophyll a ratio and cell components as indicators of nutrient limitation in two planktonic cyanobacteria subjected to low-light exposure. J Plank Res. 1993;15(11):1263-1276. Doi: 10.1093/plankt/15.11.1263
Fuenmayor G, Jonte L, Rosales-Loaiza N, Morales E. Efecto de la salinidad y la concentración de nutrientes sobre el crecimiento y composición bioquímica de la cianobacteria autóctona Oscillatoria sp. MOF-06. Ciencia. 2009;17(1):50-57.
Gantar M, Svirčev Z. Microalgae and cyanobacteria: Food for thought. J Phycol. 2008;44(2):260-268. Doi:10.1111/j.1529-8817.2008.00469.x.
Guschina I, Harwood J. Algal lipids and effect of the environment on their biochemistry. In: Arts M, Brett M, Kainz K, editors. Lipids in aquatic ecosystems. Dordrecht, The Netherlands: Springer Academics; 2009. p. 1-24. Doi:10.1007/978-0-387-89366-2_1.
Harun R, Singh M, Forde G, Danquah M. Bioprocess engineering of microalgae to produce a variety of consumer products. Renew Sust Energ Rev. 2010;14(3):1037-1047. Doi:10.1016/j.rser.2009.11.004.
Herbert D, Phipps P, Strange P. Chemical analysis of microbial cells. In: Norris J, Ribbons D, editors. Methods in microbiology Vol 5B. London, UK: Academic Press; 1971. p. 209-344.
Hu Q, Westerhoff P, Vermaas W. Removal of nitrate from groundwater by cyanobacteria: Quantitative assessment of factors influencing nitrate uptake. Appl Environ Microbiol. 2000;66(1):133-139. Doi:10.1128/AEM.66.1.133-139.2000.
Hu Q. Environmental effects on cell composition. In: Richmond A, editor. Handbook of microalgal culture, biotechnology and applied phycology. Oxford, UK: Blackwell Publishers; 2004. p. 83-94. Doi:10.1002/9780470995280.
Kochert G. Carbohydrate determination by the phenol-sulfuric acid method. In: Hellebust J., Craigie J, editors. Handbook of phycological methods. Physiological and biochemical methods. Cambridge, UK: Cambridge University Press; 1978. p. 95-97.
Konopka A, Schnur M. Biochemical composition and photosynthetic carbon metabolism of nutrient limited cultures of Merismopedia tenuissima (Cyanophyceae). J Phycol. 1981;17(2):118-122. Doi:10.1111/j.1529-8817.1981.tb00829.x.
Jindal N, Singh D, Khattar J. Kinetics and physico-chemical characterization of exopolysaccharides produced by the cyanobacterium Oscillatoria formosa. World J Microbiol Biotechnol. 2011;27(9):2139-2146. Doi:10.1007/s11274-011-0678-6.
Jonte L, Rosales N, Briceño B, Morales E. La salinidad y la irradiancia modulan el crecimiento de la cianobacteria Synechocystis minuscula en cultivos discontinuos. Multiciencias. 2003;3(1):1-13.
Lanfer-Marquez U, Barros R, Sinnecker P. Antioxidant activity of chlorophylls and their derivatives. Food Res Int. 2005;38(8-9):885-891. Doi: 10.1016/j.foodres.2005.02.012.
Leal M, Ortiz N, Mora R, Morales E. Caracterización de la cianobacteria Pseudanabaena galeata en condiciones de laboratorio. Bol Centro Invest Biol. 2001;35:223-241.
Leonardos N, Geider R. Responses of elemental and biochemical composition of Chaetoceros muelleri to growth under varying light and nitrate: phosphate supply ratios and their influence on critical N: P. Limnol Oceanogr. 2004;49(6):2105-2114. Doi: 10.4319/lo.2004.49.6.2105.
Lewitus A, Caron D. Relative effects of nitrogen and phosphorus depletion and light intensity on the pigmentation, chemical composition and volume of Pyrenomonas salina (Cryptophyceae). Mar Ecol Progr Ser. 1990;61:171-181.
Loreto C, Rosales N, Bermúdez J, Morales E. Producción de pigmentos y proteínas de la cianobacteria Anabaena PCC 7120 en relación a la concentración de nitrógeno e irradiancia. Gayana Bot. 2003;60(2):83-90.
Marker A, Jinks S. The spectrophotometric analysis of chlorophyll a and pheopigments in acetone, ethanol and methanol. In: Rai H, Marker A, editors. The measurement of photosynthetic pigments in freshwaters and standardization of methods. Arch Hydrobiol Beih Ergebn Limnol. 1982;16:3-17.
Moreno J, Vargas M, Olivares H, Rivas J, Guerrero M. Exopolysaccharide production by the cyanobacterium Anabaena sp. ATCC 33047 in batch and continuous culture. J Biotechnol. 1998;60(3):175-182. Doi: 10.1016/S0168-1656(98)00003-0.
Otero A, Vincenzini M. Extracellular polysaccharide synthesis by Nostoc strains as affected by N source and light intensity. J Biotechnol. 2003;102(2):143-152. Doi:10.1016/S0168-1656(03)00022-1.
Otero A, Vicenzini M. Nostoc (Cyanophyceae) goes nude: extracellular polysaccharides serve as a sink for reducing power under unbalanced C/N metabolism. J Phycol. 2004;40(1):74-81. Doi:10.1046/j.1529-8817.2004.03067.x.
Pattnaik U, Singh P. Effect of nitrate nitrogen on the growth, heterocyst differentiation and nitrogen fixation in rice field blue-green alga Gleotrichia sp. Arch Hydrobiol. 1978;51:318-327.
Rasmussen R, Morrissey M. Marine biotechnology for production of food ingredients. Adv Food Nutr Res. 2007;52:237-292. Doi:10.1016/S1043-4526(06)52005-4.
Rippka R, Deruelles J, Waterbury J, Herdman M, Stanier R. Generic assignments, strain histories and properties of pure cultures of cyanobacteria. J Gen Microbiol. 1979;111:1-61.
Rosales N, Jonte L, Morales E. Crecimiento y composición bioquímica de Synechococcus sp. modulados por el nitrato de sodio. Bol Centro Invest Biol. 2006;40(2):120-132.
Rosales-Loaiza N, Avendaño D, Otero A, Morales E. Crecimiento, producción de pigmentos y proteínas de la microalga Dunaliella viridis (Chlorophyta) en cultivos semicontinuos. Bol Centro Invest Biol. 2007;42(3):323-334.
Rosales Loaiza N, Morales E. Synechococcus sp. En función de parámetros y sistemas de cultivo. Cultivo de una cianobacteria de ambientes tropicales y la verificación de su potencial biotecnológico. Barcelona, Spain: Editorial Académica Española; 2013. 109 p.
Roux J. Production of polysaccharide slime by microbial mats in the hypersaline environment of a Western Australian solar saltfield. Int J Salt Lakes Res. 1996;5(2):103-130.
Saha S, Uma L, Subramanian G. Nitrogen stress induced changes in the marine cyanobacterium Oscillatoria willei BDU 130511. FEMS Microbiol Ecol. 2003;45(3):263-272. Doi:10.1016/S0168-6496(03)00162-4.
Sharma N, Prakash Tiwari S, Tripathi K, Rai A. Sustainability and cyanobacteria (blue-green algae): facts and challenges. J Appl Phycol. 2011;23(6):1059-1081. Doi:10.1007/s10811-010-9626-3.
Serpa R, Calderón A. Efecto de diferentes fuentes de nitrógeno en el contenido de carotenoides y clorofila de cuatro cepas peruanas de Dunaliella salina TEOD. Ecol Apl. 2006;5(1,2):93-99.
Simeunović J, Bešlin K, Svirčev Z, Kovač D, Babić O. Impact of nitrogen and drought on phycobiliprotein content in terrestrial cyanobacterial strains. J Appl Phycol. 2013;25(2):597-607. Doi:10.1007/s10811-012-9894-1.
Singh S, Das S. Screening, production, optimization and characterization of cyanobacterial polysaccharide. World J Microbiol Biotechnol. 2011;27(9):1971-1980.
Stephens E, Wagner L, Ross I, Hankamer B. Microalgal production systems: Global impact of industry scale-up. In: Posten C, Walter C, editors. Microalgal biotechnology: Integration and economy. Boston, USA: De Gruyter; 2012. p. 267-306.
Strickland J, Parsons T. A practical handbook of seawater analysis. Fish Res Board Can Bull. 1972;167:310.
Tsygankov A. Nitrogen-fixing cyanobacteria: a review. Appl Biochem Microbiol. 2007;43(3):50-259. Doi:10.1134/S0003683807030040
Utting S. Influence of nitrogen availability on the biochemical composition of three unicellular marine algae of commercial importance. Aquacul Engin. 1985;4(3):175-190. Doi: 10.1016/0144-8609(85)90012-3.
Vincent W. Cyanobacteria. In: Likens G, editor. Encyclopedia of inland waters. San Diego, USA: Elsevier; 2009. p. 226-232.
Vonshak A, Torzillo G. Environmental stress physiology. In: Richmond A, editor. Handbook of microalgal culture: Biotechnology and applied phycology. Oxford, UK: Blackwell Publishing; 2004. p. 57-82.
Whitton B, Potts M. Introduction to the cyanobacteria. In: Whitton B, Potts M, editors. The ecology of cyanobacteria II: Their diversity in time and space. Dordrecht, The Netherlands: Kluwer Academic Publishers; 2012. p. 1-14.
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