Publicado

2022-02-23

DETECCIÓN Y CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DEL POTATO VIRUS B (PVB) EN CULTIVOS DE PAPA CRIOLLA (Solanum phureja) EN ANTIOQUIA

DETECTION AND MOLECULAR CHARACTERIZATION OF POTATO VIRUS B (PVB) IN Solanum phureja CROPS IN ANTIOQUIA

DOI:

https://doi.org/10.15446/abc.v27n2.89422

Palabras clave:

Fitopatología, Nepovirus, secuenciación de nueva generación, PCR en tiempo real, virus de plantas. (es)
Nepovirus, next generation sequencing, phytopathology, plant virus, real time PCR (en)

Descargas

Autores/as

  • SUSANA GIRALDO RAMÍREZ Universidad Nacional de Colombia sede Medellín
  • ANDREA SIERRA MEJÍA Universidad Nacional de Colombia sede Medellín
  • MARIA ISABELLA OSPINA ORTIZ Universidad Nacional de Colombia sede Medellín
  • MÓNICA HIGUITA VALENCIA Universidad Nacional de Colombia sede Medellín
  • YULIANA GALLO GARCÍA Universidad CES
  • PABLO ANDRÉS GUTIÉRREZ SÁNCHEZ Universidad Nacional de Colombia sede Medellín
  • Mauricio Alejandro Marín Montoya Universidad Nacional de Colombia sede Medellín https://orcid.org/0000-0001-7123-2747

La papa criolla (Solanum phureja Juz. & Bukasov) es uno de los principales productos agrícolas de la región Andina de Colombia. Su siembra ocurre principalmente en pequeñas parcelas con deficiencias técnicas y bajos rendimientos. Las enfermedades de origen viral son una de las principales limitantes de este cultivo, siendo los virus PYVV, PVS, PLRV y PVV algunos de los más importantes. El nivel de conocimiento que se tiene del viroma de la papa criolla en Colombia es incipiente. En este estudio utilizando técnicas moleculares como secuenciación de alto rendimiento (HTS) y RT-PCR en tiempo real (RT-qPCR), a partir de muestras de tejido foliar de plantas procedentes de diferentes lotes de papa criolla en Antioquia (Colombia), se detectó por primera vez para el país la infección del Potato virus B (PVB), un nepovirus hasta ahora sólo registrado en Perú. Mediante análisis bioinformáticos fue posible el ensamblaje de la mayor parte del genoma de PVB, consistente de dos segmentos de 7.126 nt (ARN1) y 4.298 nt (ARN2) que codifican para dos poliproteínas (P1 y P2). Con las secuencias obtenidas se diseñaron primers específicos para la detección del PVB por RT-qPCR y RT-PCR convencional. Los resultados indicaron niveles medios de prevalencia (35%) del PVB en los cultivos de papa criolla evaluados y su ausencia en las 20 muestras evaluadas de S. tuberosum var. Diacol-Capiro. Con las técnicas aquí empleadas, se sugiere el establecimiento de un programa de seguimiento epidemiológico de PVB en Colombia y otros países andinos.

Papa criolla (Solanum phureja Juz. & Bukasov) is one of the most important agricultural products in the Colombian Andean region. S. phureja is usually cultivated in smalls plots using low-yield farm techniques. Viral diseases, mostly caused by PYVV, PVS, PLRV and PVV, are one of most important factors that hinder the productivity of this crop, however, our knowledge of the S. phureja virome in Colombia is incipient still. In this study we present the first report of a natural infection with Potato virus B (PVB), a nepovirus only reported in Peru. PVB was detected in leaf samples from different S. phureja plots in Antioquia (Colombia) using high-throughput sequencing (HTS) and real time RT-PCR (RT-qPCR). The assembled PVB genome comprised two segments of 7126 nt (ARN-1) and 4298 nt (ARN-2) coding for polyproteins P1 and P2. Genome sequences were used to design PVB-specific primers for RT-PCR and RT-qPCR. PVB was found in 35% of S. phureja samples but was not detected in S. tuberosum var. Diacol-Capiro samples. The methods used in this study could be useful in PVB surveillance programs in Colombia and other Andean countries.

Referencias

Agronet. (15 de noviembre de 2019). Red de Información y Comunicación del Sector Agropecuario Colombiano. Recuperado el 15 de noviembre de 2019 de http://www.agronet.gov.co/estadistica/Paginas

Álvarez Yepes, D., Gutiérrez Sánchez, P. A. y Marín Montoya, M. (2016). Caracterización molecular del Potato virus V (PVV) infectando Solanum phureja mediante secuenciación de nueva generación. Acta biológica colombiana, 21(3), 521-531. https://doi.org/10.15446/abc.v21n3.54712 DOI: https://doi.org/10.15446/abc.v21n3.54712

Altschul, S. F., Madden, T. L., Schäffer, A. A., Zhang, J., Zhang, Z., Miller, W. y Lipman, D. J. (1997). Gapped BLAST and PSI-BLAST: a new generation of protein database search programs. Nucleic Acids Research, 25(17), 3389-3402. https://doi.org/10.1093/nar/25.17.3389 DOI: https://doi.org/10.1093/nar/25.17.3389

Argos, P. (1988). A sequence motif in many polymerases. Nucleic Acids Research, 16(21), 9909-9916. https://doi.org/10.1093/nar/16.21.9909 DOI: https://doi.org/10.1093/nar/16.21.9909

Boratyn, G. M, Thierry-Mieg, J., Thierry-Mieg, D., Busby, B. y Madden, T. L. (2019). Magic-BLAST, an accurate RNA-seq aligner for long and short reads. BMC Bioinformatics, 20(1), 405. https://doi.org/10.1186/s12859-019-2996-x DOI: https://doi.org/10.1186/s12859-019-2996-x

Brister, J. R., Ako-Adjei, D., Bao, Y. y Blinkova, O. (2015). NCBI viral genomes resource. Nucleic Acids Research, 43(D1), D571-D577. https://doi.org/10.1093/nar/gku1207 DOI: https://doi.org/10.1093/nar/gku1207

De Souza, J., Müller, G., Perez, W., Cuellar, W. y Kreuze, J. F. (2017). Complete sequence and variability of a new subgroup B nepovirus infecting potato in central Peru. Archives of Virology, 62, 885-889. https://doi.org/10.1007/s00705-016-3147-6 DOI: https://doi.org/10.1007/s00705-016-3147-6

Finn, R. D., Bateman, A., Clements, J., Coggill, P., Eberhardt, R. Y., Eddy, S. R., Heger, A., Hetherington, K., Holm, L., Mistry, J., Sonnhammer, E. L., Tate, J y Punta, M. (2014). Pfam: the protein families database. Nucleic Acids Research, 42(1), D222-D230. https://doi.org/10.1093/nar/gkt1223 DOI: https://doi.org/10.1093/nar/gkt1223

Fuchs, M., Schmitt-Keichinger, C. y Sanfaçon, H. (2017). A renaissance in nepovirus research provides new insights into their molecular interface with hosts and vectors. Advances in Virus Research, 97, 61-105. https://doi.org/10.1016/bs.aivir.2016.08.009 DOI: https://doi.org/10.1016/bs.aivir.2016.08.009

Fuentes, S., Perez, A. y Kreuze, J. F. (20 de mayo de 2019). Dataset for: The peruvian potato virome. International Potato Center V1. Recuperado el 20 de mayo de 2020 de http://potpathodiv.org/dtablev.html. https://doi.org/10.21223/P3/YFHLQU

Gaire, F., Schmitt, C., Stussi-Garaud, C., Pinck, L. y Ritzenthaler, C. (1999). Protein 2A of grapevine fanleaf nepovirus is implicated in RNA2 replication and colocalizes to the replication site. Virology, 264(1), 25-36. https://doi.org/10.1006/viro.1999.9927 DOI: https://doi.org/10.1006/viro.1999.9927

Gallo García, Y. M., Sierra Mejía, A., Segarra, L. D., Aranda, M., Gutiérrez Sánchez, P. A. y Marín Montoya, M. (2019). Coinfección natural de virus de ARN en cultivos de papa (Solanum tuberosum subsp. Andigena) en Antioquia (Colombia). Acta Biológica Colombiana, 24(3), 546-560. https://doi.org/10.15446/abc.v24n3.79277 DOI: https://doi.org/10.15446/abc.v24n3.79277

García Ruíz, D., Olarte Quintero, M. A., Gutiérrez Sánchez, P. y Marín Montoya, M. (2016). Detección serológica y molecular del Potato virus X (PVX) en tubérculos-semilla de papa (Solanum tuberosum L. y Solanum phureja Juz. y Bukasov) en Antioquia. Revista Colombiana de Biotecnología, 18(1), 104-111. https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v18n1.51389 DOI: https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v18n1.51389

Gil, J. F., Cotes, J. M. y Marín, M. (2011). Incidencia de potyvirus y caracterización molecular de PVY en regiones productoras de papa (Solanum tuberosum L.) de Colombia. Revista Colombiana de Biotecnología, 13(1), 85-93.

Gil, J. F., Cotes, J. y Marín, M. (2012). Detección y caracterización molecular del virus X de la Papa (PVX) en regiones productoras de papa de Colombia. Revista de Protección Vegetal, 27(2), 69-76.

Gil, J. F., Cotes, J. y Marín, M. (2013). Incidencia visual de síntomas asociados a enfermedades virales en cultivos de papa de Colombia. Biotecnología en el sector agropecuario y agroindustrial, 11(2), 101-110.

Gish, W. y States, D. J. (1993). Identification of protein coding regions by database similarity search. Nature Genetics, 3, 266-272. https://doi.org/10.1038/ng0393-266 DOI: https://doi.org/10.1038/ng0393-266

Ghoshal, B. y Sanfacon, H. (2015). Symptom recovery in virus-infected plants: revisiting the role of RNA silencing mechanisms. Virology, 479-480, 67-179. https://doi.org/10.1016/j.virol.2015.01.008 DOI: https://doi.org/10.1016/j.virol.2015.01.008

Gorbalenya, A. E. y Koonin, E. V. (1993). Amino acid sequence comparisons and structure-function relationships. Current Opinion in Structural Biology, 3(3), 419-429. https://doi.org/10.1016/S0959-440X(05)80116-2 DOI: https://doi.org/10.1016/S0959-440X(05)80116-2

Grabherr, M. G., Haas, B. J., Yassour, M., Levin, J. Z., Thompson, D. A., Amit, I., Adiconis, X., Fan, L., Raychowdhury, R., Zeng, Q., Chen, Z., Mauceli, E., Hacohen, N., Gnirke, A., Rhind, N., di Palma, F., Birren, B. W., Nusbaum, C., Lindblad-Toh, K., Friedman, N. y Regev, A. (2011). Full-length transcriptome assembly from RNA-seq data without a reference genome. Nature Biotechnology, 29(7), 644-652. https://doi.org/10.1038/nbt.1883 DOI: https://doi.org/10.1038/nbt.1883

Gutiérrez, P., Jaramillo-Mesa, H. y Marín-Montoya, M. (2016). Genome sequence of a divergent Colombian isolate of potato virus V (PVV) infecting Solanum phureja. Acta Virologica, 60(1), 49-54. https://doi.org/10.4149/av_2016_01_49 DOI: https://doi.org/10.4149/av_2016_01_49

Guzmán-Barney, M., Franco-Lara, L., Rodríguez, D., Vargas, L. y Fierro, J. E. (2012). Yield losses in Solanum tuberosum group Phureja cultivar Criolla Colombia in plants with symptoms of PYVV in field trials. American Journal of Potato Research, 89, 438-447. https://doi.org/10.1007/s12230-012-9265-0 DOI: https://doi.org/10.1007/s12230-012-9265-0

Harahagazwe, D., Condor, B., Barreda, C., Bararyenya, C., Byarugaba, A., Kude, A. A., Lung’aho, C., Martinho, C., Mbiri, D., Nasona, B., Ochieng, B., Onditi, J., Randrianaivoarivony, J. M., Tankou, C. M., Worku, A., Schulte-Geldermann, E., Mares, V., de Mendiburu, F. y Quiroz, R. (2018). How big is the potato (Solanum tuberosum L.) yield gap in Sub-Saharan Africa and why? A participatory approach. Open Agriculture, 3(1), 180-189. https://doi.org/10.1515/opag-2018-0019 DOI: https://doi.org/10.1515/opag-2018-0019

Jones, D. T., Taylor, W. R. y Thornton, J. M. (1992). The rapid generation of mutation data matrices from protein sequences. Computer Applications in the Biosciences, 8, 275-282. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/8.3.275 DOI: https://doi.org/10.1093/bioinformatics/8.3.275

Joshi, N. A. y Fass, J. N. (10 de mayo de 2011). Sickle: A sliding-window, adaptive, quality-based trimming tool for FastQ files (Version 1.33). Recuperado el 10 de mayo de 2020 de https://github.com/najoshi/sickle

Koonin, E. V. y Dolja, V. V. (1992). Evolution and taxonomy of positive-strand RNA viruses: implications of comparative analysis of amino acid sequences. Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology, 28(5), 375-430. https://doi.org/10.3109/10409239309078440 DOI: https://doi.org/10.3109/10409239309078440

Kozak, M. (2005). Regulation of translation via mRNA structure in prokaryotes and eukaryotes. Gene, 361, 13-37. https://doi.org/10.1016/j.gene.2005.06.037 DOI: https://doi.org/10.1016/j.gene.2005.06.037

Kreuze, J. F., Souza-Dias, J. A. C., Jeevalatha, A., Figueira, A. R., Valkonen, J. P. T. y Jones, R. A. C. (2020). Viral Diseases in Potato. H. Campos y O. Ortiz, (Ed). The Potato Crop. Its Agricultural, Nutritional and Social Contribution to Humankind (pp. 389-430). International Potato Center. https://doi.org/10.1007/978-3-030-28683-5_11 DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-030-28683-5_11

Kumar, S., Stecher, G., Li, M., Knyaz, C. y Tamura, K. (2018). MEGA X: Molecular Evolutionary Genetics Analysis across Computing Platforms. Molecular Biology and Evolution, 35(6), 1547-1549. https://doi.org/10.1093/molbev/msy096 DOI: https://doi.org/10.1093/molbev/msy096

Mayoa, M.A. y Fritsch C. (1994). A possible consensus sequence for VPg of viruses in the family Comoviridae. FEBS Letters, 354(2), 129-130. https://doi.org/10.1016/0014-5793(94)01092-7 DOI: https://doi.org/10.1016/0014-5793(94)01092-7

Medina, H. C., Gutiérrez, P. A y Marín, M. (2015). Detección del Potato virus Y (PVY) en tubérculos de papa mediante TAS ELISA y qRT-PCR en Antioquia (Colombia). Bioagro, 27, 83-92.

Mesa, M. E., González Ramírez, M. I., Gutiérrez Sánchez, P. A y Marín Montoya, M. A. (2016). Diagnóstico serológico y molecular del Potato leafroll virus (PLRV) en tubérculos-semilla de papa en Antioquia. Acta Agronómica, 65(2), 204-210. https://doi.org/10.15446/acag.v65n2.50764 DOI: https://doi.org/10.15446/acag.v65n2.50764

Mushegian, A.R. (1994). The putative movement domain encoded by nepovirus RNA-2 is conserved in all sequenced nepoviruses. Archives of Virology, 135(3-4), 437-441. https://doi.org/10.1007/BF01310028 DOI: https://doi.org/10.1007/BF01310028

Navas, G. E. y Díaz, C. (2012). Criterios para la evaluación y producción de papa criolla para la industria. Corpoica.

Riascos Chica, M., Gutiérrez Sánchez, P. A. y Marín Montoya, M. A. (2018). Identificación molecular de Potyvirus infectando cultivos de papa en el oriente de Antioquia (Colombia). Acta Biológica Colombiana, 23(1), 39-50. https://doi.org/10.15446/abc.v23n1.65683 DOI: https://doi.org/10.15446/abc.v23n1.65683

Robinson, J. T., Thorvaldsdóttir, H., Winckler, W., Guttman, M., Lander, E. S., Getz, G. y Mesirov, J. P. (2011). Integrative genomics viewer. Nature Biotechnology, 29(1), 24-26. https://doi.org/10.1038/nbt.1754 DOI: https://doi.org/10.1038/nbt.1754

Rodríguez, L. E., Ñustez, C. E. y Estrada, E. (2009). Criolla Latina, Criolla Paisa y Criolla Colombia, nuevos cultivares de papa criolla para el departamento de Antioquia (Colombia). Agronomía colombiana, 27, 289-303.

Saitou, N. y Nei, M. (1987). The neighbor-joining method: A new method for reconstructing phylogenetic trees. Molecular Biology and Evolution, 4(4), 406-425. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.molbev.a040454 DOI: https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.molbev.a040454

Sambrook, J. y Russell, D. (2011). Molecular Cloning: A Laboratory Manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press

Sánchez, C., Corzo, P. y Pérez, O. (1991). Incidencia de virus de papa y su efecto sobre el rendimiento en tres zonas agroecológicas de Colombia. Revista ALAP, 4, 36-51.

Sierra, A., Gallo, Y., Estrada, M., Gutiérrez, P. y Marín, M. (2020). Detección molecular de seis virus de ARN en brotes de tubérculos de papa criolla (Solanum phureja) en Antioquia, Colombia. Bioagro, 32(1), 3-14.

Thomas-Sharma, S., Abdurahman, A., Ali, S., Andrade‐Piedra, J. L., Bao, S., Charkowski, A. O., Crook, D., Kadian, M., Kromann, P., Struik, P. C., Torrance, L., Garrett, K. A. y Forbes, G. A. (2016). Seed degeneration in potato: the need for an integrated seed health strategy to mitigate the problem in developing countries. Plant Pathology, 65(1), 3-16. https://doi.org/10.1111/ppa.12439 DOI: https://doi.org/10.1111/ppa.12439

Thompson, J.R., Dasgupta, I., Fuchs, M., Iwanami, T., Karasev, A. V., Petrzik, K., Sanfaçon, H., Tzanetakis, I., van der Vlugt, R., Wetzel, T., Yoshikawa, N. y ICTV Report Consortium. (2017). ICTV virus taxonomy profile: Secoviridae. Journal of General Virology, 98, 529-531. https://doi.org/10.1099/jgv.0.000779 DOI: https://doi.org/10.1099/jgv.0.000779

Vallejo, D., Gutiérrez, P. A. y Marín, M. 2016. Genome characterization of a Potato virus S (PVS) variant from tuber sprouts of Solanum phureja Juz. et Buk. Agronomía Colombiana, 34(1), 51-60. https://doi.org/10.15446/agron.colomb.v34n1.53161 DOI: https://doi.org/10.15446/agron.colomb.v34n1.53161

Valverde, R. A., Nameth, S. T. y Jordan, R. L. (1990). Analysis of double-stranded RNA for plant virus diagnosis. Plant Disease, 74(3), 255-258. https://doi.org/10.1094/PD-74-0255

Villamil-Garzón, A., Cuellar, W. J. y Guzmán-Barney, M. (2014). Natural co-infection of Solanum tuberosum crops by the Potato yellow vein virus and potyvirus in Colombia. Agronomía Colombiana, 32, 213-223. https://doi.org/10.15446/agron.colomb.v32n2.43968 DOI: https://doi.org/10.15446/agron.colomb.v32n2.43968

Cómo citar

APA

GIRALDO RAMÍREZ, S., SIERRA MEJÍA, A., OSPINA ORTIZ, M. I., HIGUITA VALENCIA, M., GALLO GARCÍA, Y., GUTIÉRREZ SÁNCHEZ, P. A. y Marín Montoya, M. A. (2021). DETECCIÓN Y CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DEL POTATO VIRUS B (PVB) EN CULTIVOS DE PAPA CRIOLLA (Solanum phureja) EN ANTIOQUIA. Acta Biológica Colombiana, 27(2), 258–268. https://doi.org/10.15446/abc.v27n2.89422

ACM

[1]
GIRALDO RAMÍREZ, S., SIERRA MEJÍA, A., OSPINA ORTIZ, M.I., HIGUITA VALENCIA, M., GALLO GARCÍA, Y., GUTIÉRREZ SÁNCHEZ, P.A. y Marín Montoya, M.A. 2021. DETECCIÓN Y CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DEL POTATO VIRUS B (PVB) EN CULTIVOS DE PAPA CRIOLLA (Solanum phureja) EN ANTIOQUIA. Acta Biológica Colombiana. 27, 2 (dic. 2021), 258–268. DOI:https://doi.org/10.15446/abc.v27n2.89422.

ACS

(1)
GIRALDO RAMÍREZ, S.; SIERRA MEJÍA, A.; OSPINA ORTIZ, M. I.; HIGUITA VALENCIA, M.; GALLO GARCÍA, Y.; GUTIÉRREZ SÁNCHEZ, P. A.; Marín Montoya, M. A. DETECCIÓN Y CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DEL POTATO VIRUS B (PVB) EN CULTIVOS DE PAPA CRIOLLA (Solanum phureja) EN ANTIOQUIA. Acta biol. Colomb. 2021, 27, 258-268.

ABNT

GIRALDO RAMÍREZ, S.; SIERRA MEJÍA, A.; OSPINA ORTIZ, M. I.; HIGUITA VALENCIA, M.; GALLO GARCÍA, Y.; GUTIÉRREZ SÁNCHEZ, P. A.; MARÍN MONTOYA, M. A. DETECCIÓN Y CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DEL POTATO VIRUS B (PVB) EN CULTIVOS DE PAPA CRIOLLA (Solanum phureja) EN ANTIOQUIA. Acta Biológica Colombiana, [S. l.], v. 27, n. 2, p. 258–268, 2021. DOI: 10.15446/abc.v27n2.89422. Disponível em: https://revistas.unal.edu.co/index.php/actabiol/article/view/89422. Acesso em: 18 abr. 2024.

Chicago

GIRALDO RAMÍREZ, SUSANA, ANDREA SIERRA MEJÍA, MARIA ISABELLA OSPINA ORTIZ, MÓNICA HIGUITA VALENCIA, YULIANA GALLO GARCÍA, PABLO ANDRÉS GUTIÉRREZ SÁNCHEZ, y Mauricio Alejandro Marín Montoya. 2021. «DETECCIÓN Y CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DEL POTATO VIRUS B (PVB) EN CULTIVOS DE PAPA CRIOLLA (Solanum phureja) EN ANTIOQUIA». Acta Biológica Colombiana 27 (2):258-68. https://doi.org/10.15446/abc.v27n2.89422.

Harvard

GIRALDO RAMÍREZ, S., SIERRA MEJÍA, A., OSPINA ORTIZ, M. I., HIGUITA VALENCIA, M., GALLO GARCÍA, Y., GUTIÉRREZ SÁNCHEZ, P. A. y Marín Montoya, M. A. (2021) «DETECCIÓN Y CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DEL POTATO VIRUS B (PVB) EN CULTIVOS DE PAPA CRIOLLA (Solanum phureja) EN ANTIOQUIA», Acta Biológica Colombiana, 27(2), pp. 258–268. doi: 10.15446/abc.v27n2.89422.

IEEE

[1]
S. GIRALDO RAMÍREZ, «DETECCIÓN Y CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DEL POTATO VIRUS B (PVB) EN CULTIVOS DE PAPA CRIOLLA (Solanum phureja) EN ANTIOQUIA», Acta biol. Colomb., vol. 27, n.º 2, pp. 258–268, dic. 2021.

MLA

GIRALDO RAMÍREZ, S., A. SIERRA MEJÍA, M. I. OSPINA ORTIZ, M. HIGUITA VALENCIA, Y. GALLO GARCÍA, P. A. GUTIÉRREZ SÁNCHEZ, y M. A. Marín Montoya. «DETECCIÓN Y CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DEL POTATO VIRUS B (PVB) EN CULTIVOS DE PAPA CRIOLLA (Solanum phureja) EN ANTIOQUIA». Acta Biológica Colombiana, vol. 27, n.º 2, diciembre de 2021, pp. 258-6, doi:10.15446/abc.v27n2.89422.

Turabian

GIRALDO RAMÍREZ, SUSANA, ANDREA SIERRA MEJÍA, MARIA ISABELLA OSPINA ORTIZ, MÓNICA HIGUITA VALENCIA, YULIANA GALLO GARCÍA, PABLO ANDRÉS GUTIÉRREZ SÁNCHEZ, y Mauricio Alejandro Marín Montoya. «DETECCIÓN Y CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DEL POTATO VIRUS B (PVB) EN CULTIVOS DE PAPA CRIOLLA (Solanum phureja) EN ANTIOQUIA». Acta Biológica Colombiana 27, no. 2 (diciembre 15, 2021): 258–268. Accedido abril 18, 2024. https://revistas.unal.edu.co/index.php/actabiol/article/view/89422.

Vancouver

1.
GIRALDO RAMÍREZ S, SIERRA MEJÍA A, OSPINA ORTIZ MI, HIGUITA VALENCIA M, GALLO GARCÍA Y, GUTIÉRREZ SÁNCHEZ PA, Marín Montoya MA. DETECCIÓN Y CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DEL POTATO VIRUS B (PVB) EN CULTIVOS DE PAPA CRIOLLA (Solanum phureja) EN ANTIOQUIA. Acta biol. Colomb. [Internet]. 15 de diciembre de 2021 [citado 18 de abril de 2024];27(2):258-6. Disponible en: https://revistas.unal.edu.co/index.php/actabiol/article/view/89422

Descargar cita

CrossRef Cited-by

CrossRef citations2

1. Andrea García, Mónica Higuita, Rodrigo Hoyos, Yuliana Gallo, Mauricio Marín, Pablo Gutiérrez. (2022). Indexing of RNA viruses in certified and uncertified potato seed-tubers from Solanum tuberosum cv. Diacol Capiro, and S. phureja cv. Criolla Colombia: a pilot study. Archives of Phytopathology and Plant Protection, 55(9), p.1082. https://doi.org/10.1080/03235408.2022.2081760.

2. Daniela Cardona, Yuliana Gallo García, Mónica Higuita, Rodrigo Hoyos Sánchez, Pablo Gutiérrez Sánchez, Mauricio Marín Montoya. (2022). Detección molecular de virus en cultivos, plántulas y semillas de gulupa (Passiflora edulis f. edulis) en el oriente de Antioquia. Bioagro, 34(2), p.125. https://doi.org/10.51372/bioagro342.3.

Dimensions

PlumX

Visitas a la página del resumen del artículo

457

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.