Published

2026-04-30

Efficacy of Neoseiulus californicus in the control of Tetranychus urticaein potted rose plants in nurseries in San Antonio del Tequendama

Eficacia de Neoseiulus californicus en el control de Tetranychus urticae enplantas de rosa en maceta en viveros de San Antonio del Tequendama

DOI:

https://doi.org/10.15446/agron.colomb.v44n1.126104

Keywords:

biological control, predatory mite, ornamental plant, integrated pest management (en)
control biológico, ácaro depredador, planta ornamental, manejo integrado de plagas (es)

Downloads

Authors

Tetranychus urticae poses a critical challenge in ornamental nurseries due to its rapid reproduction and ability to develop resistance to pesticides. In potted rose crops in San Antonio del Tequendama, Colombia, the release of the predatory mite Neoseiulus californicus proved to be a key tool for breaking the pest life cycle. The results revealed that efficacy was highly dependent on density and developmental stage: a release rate of 150 individuals m-2 reduced the egg population by 49-50% and the nymph population by 52-55% compared to the untreated control, outperforming lower release rates (50 and 100 individuals m-2) in controlling immature stages, while its impact on adults was limited. For Integrated Pest Management (IPM), these findings position N. californicus as a preventive and targeted control agent at early stages. Given that chemical treatment achieved the greatest overall reduction in the pest population but carries risks of resistance, the strategic use of N. californicus at high rates (150 individuals m-2) allows for the biological control of eggs and nymphs. This reduces initial population pressure, minimizes the need to apply synthetic acaricides, and extends the useful life of chemical tools within a sustainable ornamental production system.

Tetranychus urticae representa un desafío crítico en viveros ornamentales debido a su rápida reproducción y capacidad para desarrollar resistencia a pesticidas. En cultivos de rosas en maceta en San Antonio del Tequendama, Colombia, la liberación del ácaro depredador Neoseiulus californicus demostró ser una herramienta clave para romper el ciclo biológico de la plaga. Los resultados revelaron una eficacia altamente dependiente de la densidad y el estado de desarrollo: la tasa de liberación de 150 individuos m-2 logró reducir entre un 49-50% la población de huevos y entre un 52-55% la de ninfas frente al control sin tratar, superando en control de inmaduros a las densidades menores (50 y 100 individuos m-2), mientras que su impacto sobre los adultos fue limitado. Para el Manejo Integrado de Plagas (MIP), estos hallazgos posicionan a N. californicus como un agente de control preventivo y focalizado en fases tempranas. Dado que el tratamiento químico obtuvo la mayor reducción total de la plaga, pero acarrea riesgos de resistencia, el uso estratégico de N. californicus en dosis altas (150 individuos m-2) permite atacar las oviposiciones y ninfas de manera biológica. Esto reduce la presión poblacional inicial, minimiza la necesidad de aplicar acaricidas de síntesis y extiende la vida útil de las herramientas químicas dentro de un esquema de producción ornamental sostenible.

References

Akyazi, R., & Liburd, O. E. (2019). Biological control of the twospotted spider mite (Trombidiformes:Tetranychidae) with the predatory mite Neoseiulus californicus (Mesotigmata: Phytoseiidae) in blackberries. Florida Entomologist, 102(2), 373–381. https://doi.org/10.1653/024.102.0217

Argüelles, A., Plazas, N., Bustos, A., Cantor R., F., Rodríguez, D., & Hilarión, A. (2013). Interacción entre dos ácaros depredadores de Tetranychus urticae Koch (Acariformes: Tetranychidae) en laboratorio. Acta Biológica Colombiana, 18(1), 137–148. https://revistas.unal.edu.co/index.php/actabiol/article/view/16291

Awad, S. E., Mostafa, E. M., Mahrous, M. E., & Salem, A. A. (2019). Prey consumption and fecundity of Phytoseiulus persimilis Athias-Henriot fed on different stages and densities of Tetranychus urticae Koch. (Acari: Phytoseiidae: Tetranychidae) under laboratory conditions. Zagazig Journal of Agricultural Research, 46(1), 43–50.

Barajas Chacón, K., Carrillo Cano, N. & Chaparro Sierra, O. D. (2016). Propagación in vitro de orquídeas para exportación. Invitrorchid [Undergraduate thesis, Universidad de La Salle]. https://ciencia.lasalle.edu.co/items/0317abdd-c62a-45cb-992c-8414996e347b

Bullor, L., Braude, H., Monzón, J., Cotes Prado, A. M., Casavola, V., Carbajal Morón, N. & Risopoulos, J. (2023). Bioinsumos: Oportunidades de inversión en América Latina. Direcciones de inversión No. 9. Roma, FAO. https://doi.org/10.4060/cc9060es

Casuso, N., Smith, H. A., & López, L. (2020). La araña roja, Tetranychus urticae: ciclo de vida. EDIS, (4). https://doi.org/10.32473/edis-in1287-2020

Cerna, E., Landeros, J., Guerrero, E., Flores, A. E., & Badii, M. H. (2005). Detección de resistencia enzimática por productos sinergistas en una línea de campo de Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranychidae). Folia Entomológica Mexicana, 44(3), 287–295. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=42444302

Chacón-Hernández, J., Cerna-Chávez, E., Ochoa-Fuentes, Y., Hernández-Juárez, A., Palacios-Bazaldúa, L., & Landeros-Flores, J. (2016). Spatial distribution and population fluctuation of Tetranychus urticae (Koch) and Phytoseiulus persimilis (Athias-Henriot) in rose crops. Phyton-International Journal of Experimental Botany, 85, 236–245. https://doi.org/10.32604/phyton.2016.85.236

Chawla, N., Sunita, S., Kamlesh, K., & Kumar, R. (2013). Bioremediation: An emerging technology for remediation of pesticides. Research Journal of Chemistry and Environment, 17(4), 88–105. https://www.researchgate.net/publication/235969067_Bioremediation_An_emerging_technology_for_remediation_of_pesticides

Chisabo García, N. (2021). Uso de Phytoseidos en el manejo integrado de Tetranychus urticae en ornamentales [Undergraduate thesis, Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales]. https://repository.udca.edu.co/server/api/core/bitstreams/f1fbc570-3e14-4619-89e0-ea1476dcc1b8/content

Colviveros. (2023, January 5). Información de interés sobre el viverismo en Colombia y el mundo. https://colviveros.org/Colviveros-datos-viverismo.html

Dagne, G. A. (2004). Hierarchical Bayesian analysis of correlated zero‐inflated count data. Biometrical Journal, 46(6), 653–663. https://doi.org/10.1002/bimj.200310077

Fonseca, M. M., Pallini, A., Marques, P. H., Lima, E., & Janssen, A. (2020). Compatibility of two predator species for biological control of the two-spotted spider mite. Experimental and Applied Acarology, 80, 409–422. https://doi.org/10.1007/s10493-020-00472-8

Forero-Patiño, J. J., Argüelles, Z. P., Cantor R., F., & Rodríguez, D. (2011). Bioensayo para evaluar la compatibilidad de adultos de Neoseiulus californicus (Parasitiformes: Phytoseiidae) con algunos pesticidas de uso comercial en condiciones semicontroladas. Agronomía Colombiana, 29(1), 59–68. https://revistas.unal.edu.co/index.php/agrocol/article/view/18072

Gómez Acosta, C. (2024). Control biológico y microbiológico de plagas y enfermedades en cítricos [Undergraduate thesis, Universidad de Caldas]. https://repositorio.ucaldas.edu.co/handle/ucaldas/19978

González Villalobos, J. S., & Pachón Porras, G. A. (2013). Evaluación de la agrocadena de plantas ornamentales en el enfoque micro regional del municipio de San Antonio del Tequendama. Boletín Semillas Ambientales, 7(2), 41–47. https://revistas.udistrital.edu.co/index.php/bsa/article/view/9494

Granados García, M. E., Chirino Miranda, E., Gandía Navalón, C., Vallejo Calzada, V. R., & Vilagrosa Carmona, A. (2019). Efecto de la luz y la humedad del suelo sobre variables fisiológicas en seis especies forestales mediterráneas plantadas bajo dosel de pinar. Revista Chapingo Serie Ciencias Forestales y del Ambiente, 25(3), 461–476. https://doi.org/10.5154/r.rchscfa.2018.12.090

Hilarión, A., Niño, A., Cantor, F., Rodríguez, D., & Cure, J. R. (2008). Criterios para la liberación de Phytoseiulus persimilis Athias Henriot (Parasitiformes: Phytoseiidae) en cultivo de rosa. Agronomía Colombiana, 26(1), 68–77. https://revistas.unal.edu.co/index.php/agrocol/article/view/13918

Instituto Nacional Forestal [INAFOR], Universidad Nacional Agraria [UNA], & Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación y la Agricultura [FAO]. (2020). Manual de plagas y enfermedades en viveros y bosques de Nicaragua. Managua, Nicaragua. https://www.researchgate.net/publication/344955885_Manual_de_Plagas_y_Enfermedades_en_Viveros_y_Bosques_de_Nicaragua

Kalmosh, F. S., Zhang, B., Đukić, N., Alamri, A., Alrokayan, S., & Xu, X. (2026). Intraguild predation and chemical cue responses between Phytoseiulus persimilis and Neoseiulus californicus in laboratory assays. Insects, 17(2), Article 157. https://doi.org/10.3390/insects17020157

Loje Castrejón, C. E. (2019). Efecto de Lecanicillium lecanii (Zimm.) sobre Tetranychus sp. en rosa (Rosa sp.) [Undergraduate thesis, Universidad Nacional de Cajamarca]. http://hdl.handle.net/20.500.14074/3477

López, M., & Liburd, O. E. (2023). Effects of intercropping marigold, cowpea and an insecticidal soap on whiteflies and aphids in organic squash. Journal of Applied Entomology, 147(7), 452–463. https://doi.org/10.1111/jen.13141

Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural – MADR. (2023, September 22). El sector viverista colombiano presentó la belleza y las oportunidades de las plantas vivas y ornamentales en Expoplantas. https://www.minagricultura.gov.co/el-ministerio/sala-de-p/noticias/el-sector-viverista-colombiano-presentola-belleza-y-las-oportunidades-de-las-plantas-vivas-y-ornamentales-en-expoplantas

Ordoñez Blanco, J. C., Morales Liscano, G., López Ardila, M. M., & Cadena Vargas, C. E. (2021). Las orquídeas de San Antonio del Tequendama, Cundinamarca, Colombia. V1.1. Jardín Botánico de Bogotá “José Celestino Mutis”. Dataset/Checklist. http://catalogador.jbb.gov.co/app/resource?r=001_bio-le_sc_2019033

Pérez-Sierra, A. M., Mora-Sala, B., León, M., García-Jiménez, J., & Abad-Campos, P. (2012). Enfermedades causadas por Phytophthora en viveros de plantas ornamentales. Boletin de Sanidad Vegetal: Plagas, 38(1), 143–156. http://hdl.handle.net/10251/72990

Rincón, R. A., Rodríguez, D., & Coy-Barrera, E. (2019). Botanicals against Tetranychus urticae Koch under laboratory conditions: a survey of alternatives for controlling pest mites. Plants, 8(8), Article 272. https://doi.org/10.3390/plants8080272

Rojas, F., Torres, P., Rodríguez, D., & Cantor, F. (2011). Efecto de tres densidades de Tetranychus urticae (Acari: Tetranychidae) sobre el crecimiento de plantas de rosa. Inventum, 6(11), 42–47. https://doi.org/10.26620/uniminuto.inventum.6.11.2011.42-47

Ruiz Palacios, J. S. (2017). Diseño de un sistema de buenas prácticas agrícolas como estrategia para la certificación orgánica otorgada por , para la empresa Agricultura e Inversiones Agrin S.A.S. [Undergraduate thesis, Universidad Autónoma de Occidente]. http://red.uao.edu.co//handle/10614/9904

Schausberger, P., & Saito, Y. (2010). Plant mites and sociality—diversity and evolution. Experimental and Applied Acarology, 52(4), 453–455. https://doi.org/10.1007/s10493-010-9409-1

Sharma, K., Shivani, Pandey, V., Keshari, D., & Tutlani, A. (2025). Diseases and pest management in nurseries: Challenges, strategies and emerging technologies. International Journal of Environment and Climate Change, 15(5), 71–90. https://doi.org/10.9734/ijecc/2025/v15i54836

Souza-Pimentel, G. C., Reis, P. R., Silveira, E. C., Marafeli, P. P., Silva, E. A., & Andrade, H. B. (2014). Biological control of Tetranychus urticae (Tetranychidae) on rosebushes using Neoseiulus californicus (Phytoseiidae) and agrochemical selectivity. Revista Colombiana de Entomología, 40(1), 80–84. http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0120-04882014000100014

Tiftikçi, P., Kök, Ş., & Kasap, İ. (2020). Biological control of twospotted spider mites [Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranychidae)] using Phytoseiulus persimilis Athias-Henriot (Acari: Phytoseidae) at different ratios of release on field-grown tomatos. Biological Control, 151, Article 104404. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2020.104404

Yari, S., Hajiqanbar, H., Farazmand, A., Rashed, A., & Fathipour, Y. (2025). Eficacia de la liberación única y combinada de Phytoseiulus persimilis y Amblyseius swirskii en diferentes proporciones de liberación para el control de Tetranychus urticae y Frankliniella occidentalis en plantas de rosas. Revista Internacional de Manejo de Plagas, 71(2), 245–255. https://doi.org/10.1080/09670874.2023.2185312

Dimensions

PlumX

Article abstract page views

9

Downloads

Download data is not yet available.

How to Cite

Pardo-Pardo, A. M., Melo-Martinez, S. E., & Fuentes-Quintero, L. S. (2026). Efficacy of Neoseiulus californicus in the control of Tetranychus urticaein potted rose plants in nurseries in San Antonio del Tequendama. Agronomía Colombiana, 44(1), e126104. https://doi.org/10.15446/agron.colomb.v44n1.126104