Publicado

2015-07-01

Mejoramiento de la germinación, control de la hiperhidricidad y formación de brotes en Vasconcellea stipulata Badillo

Enhancement of germination, hyperhydricity control and in vitro shoot formation of Vasconcellea stipulata Badillo

DOI:

https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v17n2.43611

Palabras clave:

dormancy, germination, embreo culture, hyperhydricity, embryo culture, germinación, cultivo de embriones, hiperhidricidad (es)

Autores/as

  • Diego Paúl Vélez-Mora Universidad Técnica Particular de Loja
  • Rosa Armijos González Universidad Técnica Particular de Loja
  • Miguel Jordán Zimmermann Universidad Mayor

Título en ingles: Enhancement of germination, hyperhydricity control and in vitro shoot formation of Vasconcellea stipulata Badillo

Vasconcellea stipulata posee una gran importancia comercial debido a su actividad enzimática y como fuente para el mejoramiento genético de papaya, debido a su resistencia al virus de la mancha anular de esta especie. Sin embargo, debido a su baja regeneración por semillas y al limitado conocimiento de sus propiedades genéticas y farmacéuticas, esta especie no es cultivada ampliamente. La propagación a través del cultivo in vitro de semillas se ha usado para contrarrestar este tipo de problema, pero la hiperhidricidad, un trastorno fisiológico, expresado principalmente en los ejes embrionarios en desarrollo y asociado específicamente a esta especie, es una restricción significativa. Con el fin de obtener material de élite para el cultivo de V. stipulata, el objetivo de este trabajo fue incrementar la germinación, controlar la hiperhidricidad en embriones y evaluar el potencial para inducir respuestas morfogénicas, es decir, la formación de brotes. Nuestros resultados mostraron que es posible aumentar la germinación hasta un 53% en condiciones in vitro, dentro de un período más corto en presencia de peróxido de hidrógeno. Además, la hiperhidricidad se redujo significativamente (50%) en condiciones in vitro cuando se incluyó ácido giberélico en bajas concentraciones en el medio 1/2 Nitsch y Nitsch. Esto permitió recuperar hasta aproximadamente el 80% de plántulas viables. Finalmente, otros reguladores de crecimiento vegetal evaluados, indujeron la formación de brotes en yemas axilares y la formación de callos en secciones de hoja derivadas de plántulas.

Vasconcellea stipulata has great commercial importance because of its enzymatic activity and as a source for genetic improvement of papaya since it is resistant to the papaya ringspot virus. However, due to its low regeneration by seeds and limited knowledge of its genetic and pharmaceutical properties, this species is not widely cultivated. For propagation, in vitro culture of seeds has been used to address this problem, but hyperhydricity, a physiological disorder, mainly expressed in the developing embryonic axis and specifically associated with this species, is a significant constraint. In order to obtain elite material for culture of V. stipulata, the aim of this work was to increase germination, to control hyperhydricity in embryos and to evaluate the potential to induce morphogenic responses, i.e., shoot formation. Our results showed that it is possible to increase germination up to 53% under in vitro conditions within a short period in the presence of hydrogen peroxide. In addition, hyperhydricity was significantly reduced (50%) in vitro when gibberellic acid concentrations were included on a 1/2 Nitsch and Nitsch nutrient medium, resulting in approximately 80% recovery of viable seedlings. Finally, other plant growth regulators were evaluated and found to trigger shoot formation in axillary buds as well as induce the formation of callus in leaf sections derived of seedlings.

Key words: germination, embryo culture, hyperhydricity.

Referencias

Acram, M. T., Richard, R. W. & Warren, H. S. (1996). Comparative anatomy of four rare Australian plants grown in vitro. Botanic Gardens Micropropagation News, 2(2), 20-25.

Ascencio, A., Gutiérrez, H., Rodríguez, B. & Gutiérrez, A. (2008). Plant regeneration of Carica papaya L. through somatic embryogenesis in response to light quality, gelling agent and phloridzin. Scientia Horticulturae, 118(1), 155-160.

Badillo, V. (1993). Caricaceae, Segundo Esquema. Revista de la Facultad de Agronomía de la Universidad Central de Venezuela, 43(1), 1-111.

Badillo, V. (2000). Carica L. vs. Vasconcellea St. Hill (Caricaceae) con la rehabilitación de este último. Ernstia, 10(1), 74-79.

Chen, M. H., Chen, C. C., Wang, D. N. & Chen, F. C. (1991). Somatic embryogenesis and plant regeneration from immature embryos of Carica papaya x Carica cauliflora cultured in vitro. Canadian Journal of Botany, 69(19), 1913-1918.

Clarindo, W.R., Carvalho, C. R., Araújo, F. S., Abreu, I. S. & Otoni, W. C. (2008). Recovering polyploid papaya in vitro regenerants as screened by flow cytometry. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 92(1), 207-214.

De Winnaar, W. (1988). Clonal propagation of papaya in vitro. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 12(1), 305-310.

De Zerpa, D. M. (1980). Comportamiento meiótico de la descendencia híbrida producida al transferir el carácter bisexual de Carica pubescens a Carica stipulata. Revista Facultad de Agronomía (Maracay), 11(1), 5-47

Drew, R., O’Brien, C. & Magdalita, P. (1998). Development of Carica interspecific hybrids. Acta Horticulturae, 461(1), 285-292.

Dolatabadian, A. & Modarres-Sanavy, S. (2008). Effect of the ascorbic acid, pyridoxine and hydrogen peroxide treatments on germination, catalase activity, protein and malondialdehyde content of three oil seeds. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 36(2), 61-66.

Fitch, M. M. M. (1993). High frequency somatic embryogenesis and plant regeneration from papaya hypocotyl callus. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 32(1), 205-212.

Guerrero, D. & Castro, S. (1999). Cultivo de babaco en Loja. Universidad Nacional de Loja. Proyecto VLIR. Pp 10-30.

Horovitz, S. & Jiménez, H. (1967). Cruzamientos interespecíficos e intergenéricos en Caricaceas y sus implicaciones fitotécnicas. Agronomía Tropical, 17(1), 323-243.

ISTA (International Seed Testing Association), (2005). International Rules for Seed Testing. Bassersdorf, CH-Switzerland.

IUCN. (2003). The IUCN red list of threatened species. IUCN Species Survival Comisión. IUCN, Gland, Switzerland, and Cambridge, UK.

Ivanova, M. & Van Staden, J. (2008). Effect of ammonium ions and cytokinins on hyperhydricity and multiplication rate of in vitro regenerated shoots of Aloe polyphylla. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 92(1), 227-231.

Jiménez, Y., Romero, J., & Scheldeman, X. (1998). Colección, caracterización y descripción de Carica x heilbornii nm. pentagona B.; Carica pubescens (A.DC) Solms-Laub y Carica stipulata B., en la provincia de Loja. Revista de Difusión Técnica y Científica de la Facultad de Ciencias Agrícolas de la Universidad Nacional de Loja, 29(1), 43-54.

Jordán, M. (1986). Somatic embryogenesis from cell suspension cultures in Carica candamarcensis. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 7(1), 257-251.

Jordán, M. & Piwanski, D. (1997). Regeneration of babaco [Carica pentagona (Heilborn) Badillo] using leaf explants and shoot-tip culture. YTON, 61(1/2), 109-115.

Jordán, M. (1992). Micropropagation of Papaya (Carica sp). In: Bajaj Y. P. S. 1992. Biotechnology in Agriculture and Forestry. Springer, Berlin. Verlag. 18, 418-459.

Klein, J. D., Wood, L.A. & Geneve, R.L. (2008). Hydrogen peroxide and color sorting improves germination and vigor of eastern gamagrass (Tripsacum dactyloides) seed. Acta Horticulturae, 782(1), 93-98.

Koehler, A. D., Carvalho, C. R. & Abreu, I. S. (2013). Somatic embryogenesis from leaf explants of hermaphrodite Carica papaya: a new approach for clonal propagation. African Journal of Biotechnology, 12(18), 2386-2391.

Kyndt, T., Romeijn, E., Van Droogenbroeck, B., Romero, J., Gheysen, G. & Goetghebeur, P. (2005a). Species relationships in the genus Vasconcellea (Caricaceae) based on molecular and morphological evidence. American Journal of Botany, 92(6), 1033-1044.

Kyndt, T., Van Droogenbroeck, B., Romeijn, E., Romero, J., Scheldeman, X., Goetghebeur, P., Van Damme, P. & Gheysen, G. (2005b). Molecular phylogeny and evolution of Caricaceae based on rDNA internal transcribed spacer (ITS) and chloroplast sequence data. Molecular Phylogenetics and Evolution, 37(1) 442-459.

Loreti, F. & Pasqualetto, P. (1986). Vitrification of plants culture in vitro. Proceedings of the International Plant Propagators Society, 36(1), 66-71.

Magdalita, P., Drew, R., Adkins, S. & Godwin, I. (1997). Morphological, molecular and cytological analysis of Carica papaya x C. cauliflora interspecific hybrids. Theoretical and Applied Genetics, 95(1), 224-229.

Marga, F., Vebret, L. & Morvan, H. (1997). Agar fractions could protect apple shoots cultured in liquid media against hyperhydricity. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 49(1), 1-5.

Mondal, M., Sukumar, G. & Banran, B. (1994). Callus culture and plantlet production in Carica papaya (Var. Honey Dew). Plant Cell Reports, 13(1), 390-393.

Moreno, J., Sarria, V., Polo, A. & Giraldo, L. (2007). Evaluación del peróxido de hidrógeno en la oxidación de fenol con hierro soportado sobre tela de carbón activado. Información Tecnológica, 18(2), 67-72.

Murashige, T. & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth at bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15(3), 473-97.

Nitsch, J. P. & Nitsch, C. (1969). Haploid plants from pollen grains. Science, 163(3863), 85-87.

Pérez, A., Reyes, M. & Cuevas, J. (1980). Germination of two papaya varieties: effect of seed aeration, K-treatment, removing of the sarcotesta, high temperature, soaking in distilled water and age of seeds. Journal of Agriculture of the University of Puerto Rico, 64(1), 164-172.

R Development Core Team (2012) R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria.

Scheldeman, X. (2002). Distribution and potential of cherimoya (Annona cherimola Mill.) and highland papayas (Vasconcellea spp.) in Ecuador. PhD Thesis. Faculty of Agricultural and applied Biological Sciences, University Ghent. Belgium. p 165.

Yahiro, M. & Oryoji, Y. (1980). Effects of gibberellin and cytokinin treatments on the promotion of germination in papaya, Carica papaya L., seeds. Memoris of the Faculty of Agriculture, 16(1), 45-51.

Ziv, M. (1991). Quality of micropropagated plants - vitrification. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 27(1), 64–69.

Ziv, M. & Ariel, T. (1992). On the relation between vitrification and stomatal cell wall deformity in carnation. Acta Horticulturae, 314(1), 121-129.

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Vélez-Mora, D. P., Armijos González, R., & Jordán Zimmermann, M. (2015). Mejoramiento de la germinación, control de la hiperhidricidad y formación de brotes en Vasconcellea stipulata Badillo. Revista Colombiana De Biotecnología, 17(2), 16-21. https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v17n2.43611