Sulfuric acid as a germination stimulator in forage soybean seeds (Neonotonia wightii)
Ácido sulfúrico como estimulante de la germinación en semillas de soja forrajera (Neonotonia wightii)
DOI:
https://doi.org/10.15446/rfnam.v77n3.109179Keywords:
Immersion time, Latency, Scarification, Seminal cover (en)Tiempo de inmersión, Latencia, Escarificación, Cubierta seminal (es)
Forage soybean (Neonotonia wightii) is a legume frequently used as a cover crop in field crops. However, as a species of the Phaseoloideae subfamily, it is characterized by the physical latency of the seed, which makes it difficult to obtain a high, homogeneous, and rapid germination. The aim of the present study was to determine which method of scarification stimulates the germination process to a greater extent. The following immersion times were evaluated: 5 to 20 minutes in 98% sulfuric acid, 24 hours in 5.4% sodium hypochlorite, water, and gibberellic acid [100 ppm], 15 minutes of treatment with sandpaper and the combination of these last two. They were distributed in a completely randomized experimental design, where eight treatments and a control were evaluated, with three replicates each and 200 seeds as experimental units, subjected to controlled conditions (germination chambers at constant temperatures and a relative humidity of 27 °C and 70%, respectively) during the spring of 2022. The results were favorable, a high germination percentage was obtained from seeds subjected to a 20-minute immersion time in sulfuric acid (90% germination and an average of six germinated seeds per day) and this was significantly higher than the rest, making it an effective method to break the physical latency of the seeds, as it removes the impermeable cover allowing inhibition and consequently the activation of the seed’s metabolism.
La soja forrajera (Neonotonia wightii) es una leguminosa frecuentemente utilizada como cubierta en cultivos de campo. Sin embargo, al ser una especie de la subfamilia Phaseoloideae, se caracteriza por la latencia física de la semilla, lo que dificulta obtener una germinación alta, homogénea y rápida. El objetivo del presente estudio fue determinar cuál método de escarificación estimula en mayor medida el proceso de germinación, se evaluaron tiempos de inmersión desde los 5 hasta los 20 minutos en ácido sulfúrico (98%), 24 horas en inmersión en hipoclorito de sodio (5,4%), agua y ácido giberélico [100 ppm], 15 minutos con lija y el combinado de estas dos últimas, las cuales fueron distribuidas en un diseño experimental completamente al azar, donde se evaluaron ocho tratamientos y un testigo, tres repeticiones cada uno y 200 semillas como unidades experimentales, sometidas en condiciones controladas (cámaras de germinación a temperaturas y humedad relativa constantes de 27 °C y 70%, respectivamente) durante la primavera del 2022. Los resultados fueron favorables, un alto porcentaje de germinación se obtuvo de las semillas sometidas a un tiempo de inmersión de 20 minutos en ácido sulfúrico (90% de germinación y un promedio de germinación de seis semillas germinadas por día) y fue significativamente mayor que el resto. Este método resulta efectivo para romper la latencia física de las semillas, debido a la remoción de la cubierta impermeable, permitiendo la inhibición en agua y consecuentemente la activación del metabolismo de la semilla.
References
Acosta Y, Santiago F, Escalante D, Mazorra C, Cejas I et al (2020) Cryo-exposure of Neonotonia wightii wigth and Am seeds enhances field performance of plants. Acta Physiologiae Plantarum 42 (13): 1-6. https://doi.org/10.1007/s11738-019-3010-y
Araya E, Gómez L, Hidalgo N and Valverde R (2000) Efecto de la luz y del ácido giberélico sobre la germinación in vitro de Jaul (Alnus acuminata). Agronomía Costarricense 24(1): 75-80. https://www.redalyc.org/pdf/436/43624108.pdf
Baskin CC and Baskin JM (2014) Seeds: Ecology, biogeography, and evolution of dormancy and germination. Second edition. Academic Press, San Diego, 150-162.
Bécquer CJ and Prévost D (2016) Nodule formation potential in forage and grain legumes from Rhizobia indigenous to Sancti Spíritus, Cuba. Cuban Journal of Agricultural Science 48(3). https://cjascience.com/index.php/CJAS/article/view/589
Camacho MF (2011) Capítulo 1: Definición y constitución de las semillas. En: Dormición de semillas: causas y tratamientos. Segunda edición. Editorial Trillas, 16-20.
Castillo-Quiroz D, Antonio-Bautista A, Ávila-Flores DY, Sáenz-Reyes JT and Castillo-Reyes F (2018) Tratamientos químicos y biológicos para estimular la germinación en semillas de Nolina cespitifera Trel. Polibotánica 45: 147-156. https://doi.org/10.18387/polibotanica.5.11
Cotler H, Corona JA and Galeana-Pizaña JM (2020) Erosión de suelos y carencia alimentaria en México: una primera aproximación. Investigaciones Geográficas (101). https://doi.org/10.14350/rig.59976
De Morais LF, Deminicis BB, De Pádua FT, Morenz MJ et al (2014) Methods for breaking dormancy of seeds of tropical legumes. American Journal of Plant Sciences 5: 1831-1835. http://doi.org/10.4236/ajps.2014.513196
Di Rienzo JA, Casanoves F, Balzarini MG et al (2020) InfoStat versión 2020. Centro de Transferencia InfoStat, FCA, Universidad Nacional de Córdoba, Argentina. http://www.infostat.com.ar
Febles G and Padilla C (1977) Effect of sulphuric acid on the germination and establishment of Glycine wightii. Cuban Journal of Agricultural Science 11: 105.
Finch-Savage WE and Leubner-Metzger G (2006) Seed dormancy and the control of germination. New Phytologist 171: 501-523. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2006.01787.x
Flores ME, Cáceres WE, Aguirre TL and Castillo MS (2020) Efecto de la escarificación en la germinación de semillas de soya forrajera perenne (Neonotonia wightii). Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú 31(3). http://www.scielo.org.pe/pdf/rivep/v31n3/1609-9117-rivep-31-03-e16728.pdf DOI: https://doi.org/10.15381/rivep.v31i3.16728
García VA (2016) La vegetación como factor de control de la erosión. Repertorio Científico 19(1) 13-17. https://revistas.uned.ac.cr/index.php/repertorio/article/view/2529/3217
Galíndez G, Malagrina G, Ceccato D, Ledesma T, Lindow-López L and Ortega-Baes P (2015) Dormición física y conservación ex situ de semillas de Amburana cearensis y Myroxylon peruiferum (Fabaceae). Boletín de la Sociedad Argentina de Botánica 50(2): 153-161. http://www.scielo.org.ar/pdf/bsab/v50n2/v50n2a03.pdf DOI: https://doi.org/10.31055/1851.2372.v50.n2.11660
González-Amaya LJ, Pita BE, Pinzón-Sandoval EH, Cely GE and Serrano PA (2018) Effect of pre-germination treatments in Dianthus barbatus L. seeds cv. ‘Purple’ under controlled conditions. Revista de Ciencias Agrícolas 35(1): 58-68. https://doi.org/10.22267/rcia.183501.83
Jannoyer ML, Le Bellec F, Lavigne C, Achard R and Malézieux E (2011) Choosing cover crops to enhance ecological services in orchards: A multiple criteria and systemic approach applied to tropical areas. Procedia Environmental Sciences 9: 104–112. https://doi.org/10.1016/j.proenv.2011.11.017
Labrada R (2004) Manejo de malezas para países en desarrollo. Addendum 1. Capítulo 3. Opciones de manejo y perspectivas. Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación (FAO). https://www.fao.org/4/y5031s/y5031s00.htm
Lima ED, Quintanilha SC, Deminicis BB, Souza VA, Valente TN et al (2019) Germination of forage seeds through cattle as a natural propagator. Journal of Agricultural Science. https://doi.org/10.5539/jas.v11n1p231
Maqueira-López LA, Roján-Herrera O, Solano-Flores J and Milagros-Santana I (2021) Germination of bean seeds (Phaseolus vulgaris L.) at different temperatures. Cultivos Tropicales 42(2). http://scielo.sld.cu/pdf/ctr/v42n2/en_1819-4087-ctr-42-02-e03.pdf
Merino-Valdés M, Andrés-Meza P, Leyva O, Sánchez H, Murguía-González J et al (2018) Influencia de tratamientos pregerminativos en semillas de chile manzano (Capsicum pubescens Ruiz & Pav.). Acta Agronómica 67(4): 531-537. https://doi.org/10.15446/acag.v67n4.73426
Morris JB, Wang ML and Tonnis B (2013) Variability for phenotype, anthocyanin indexes, and flavonoids in accessions from a close relative of soybean, Neonotonia wightii (Wight & Arn JA Lackey) in the U.S. Germplasm Collection for potential use as a health forage. Soybean–Bio-Active Compounds. Manhattan, NY: InTech, 375-386. http://doi.org/10.5772/53102
Saldívar-Iglesias P, Laguna-Cerda A, Gutiérrez-Rodríguez F and Domínguez-Galindo M (2010) Ácido giberélico en la germinación de semillas de Jaltomata procumbens (Cav.) J. L. Gentry. Agronomía Mesoamericana 21(2): 327-331. https://www.scielo.sa.cr/pdf/am/v21n2/a12v21n2.pdf DOI: https://doi.org/10.15517/am.v21i2.4895
Tauro TP, Nezomba H, Mtambanengwe F and Mapfumo P (2009) Germination, field establishment patterns and nitrogen fixation of indigenous legumes on nutrient-depleted soils. Simbiosis 48: 92-101. https://doi.org/10.1007/BF03179988
Varela SA and Arana MV (2011) Latencia y germinación de semillas. Tratamientos pregerminativos. EEA Bariloche, INTA. https://repositorio.inta.gob.ar/xmlui/handle/20.500.12123/11393
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CrossRef Cited-by
1. Xavier Clemente García Cevallos, Daine Tatiana Guevara Trujillo, Yordy Werley Polindara Moncayo. (2026). Viabilidad y capacidad germinativa en semillas de Pterocaulon alopecuroides (Lam.) DC., una planta de uso medicinal . Colombia forestal, 29(1), p.e23642. https://doi.org/10.14483/2256201X.23642.
2. Santi Watthana, Siriduangkamol Kaphang, Chuthapond Musimun, Rungtip Malaiphis, Nooduan Muangsan. (2026). Pretreatment and storage effects on seed germination of Adenia viridiflora Craib.. Journal of Seed Science, 48 https://doi.org/10.1590/2317-1545v48299886.
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