Publicado
Manejo de diferentes pretratamientos para optimizar la viabilidad de semillas de orquídeas
Management of different pretreatments to optimize seed viability of orchids
DOI:
https://doi.org/10.15446/acag.v72n4.112433Palabras clave:
germinación, Pleurothallis sp., Spathoglotti plicata, Stelis sp., tetrazolio (es)germination, Pleurothallis sp, Spathoglotti plicata, Stelis sp, tetrazolium (en)
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Las orquídeas son una de las familias de plantas con más inconvenientes para su propagación, por lo cual es importante conocer la viabilidad de sus semillas. En este sentido, la prueba de tetrazolio y la germinación in vitro son la mejor alternativa para evaluar de forma rápida, exacta y efectiva su capacidad germinativa. Teniendo en cuenta lo anterior, el objetivo de esta investigación fue evaluar la viabilidad de semillas de Pleurothallis sp, Spathoglottis plicata y Stelis sp, utilizando diferentes pretratamientos para optimizar la prueba de tetrazolio. Para esto, se comparó la eficacia de cinco pretratamientos en los cuales las semillas fueron sometidas a diferentes soluciones: cloro 0.1 %, cloro 0.2 %, agua desionizada (H2Od), solución con sacarosa 10 % (p/v) y un control (sin pretratamiento) durante un lapso de 8 minutos. Posteriormente, las semillas se sumergieron en dos dosis de tetrazolio (0.25 % y 0.5 %) durante tres tiempos de exposición (6, 12 y 24 h), en completa oscuridad. Seguidamente, se empleó el medio de cultivo basal MS durante 55 días para evaluar la germinación in vitro. De acuerdo con los resultados obtenidos, fue posible observar que los pretratamientos con agua desionizada (H2Od) y la solución con sacarosa al 10 % presentaron los mejores índices de viabilidad para cada una de las especies estudiadas, los cuales se correlacionaron con los porcentajes de germinación in vitro obtenidos. Conviene subrayar que Stelis sp. fue la especie con el mejor índice, con 99 % usando el pretratamiento de agua desionizada a una dosis de 0.25 % y tiempo de exposición de 24 horas, y con un 100 % de viabilidad utilizando el pretratamiento de solución de sacarosa al 10 % con una dosis de 0.25 % durante 24 horas.
Orchids are one of the most difficult plant families to propagate, so it is important to determine the viability of their seeds. In this sense, the tetrazolium test and in vitro germination are the best alternatives to evaluate their germination capacity in a fast, accurate, and effective way. Considering the above, the aim of this research was to evaluate the viability of Pleurothallis sp, Spathoglottis plicata, and Stelis sp. seeds, using different pretreatments to optimize the tetrazolium test. For this, the efficacy of five pretreatments was compared in which the seeds were subjected to different solutions: chlorine 0.1 %, chlorine 0.2 %, deionized water (H2Od), 10 % (w/v) sucrose solution, and a control (no pretreatment), for a period of 8 minutes. Then, the seeds were submerged in two doses of tetrazolium (0.25 % and 0.5 %) during three exposure times (6, 12, and 24 h), in complete darkness. Subsequently, the basal MS culture medium was used for 55 days to evaluate in vitro germination. According to the obtained results, it was observed that the pretreatments with deionized water (H2Od) and the 10 % sucrose solution presented the best viability indexes for each of the studied species, which correlated with the in vitro germination percentages obtained. It should be emphasized that Stelis sp. was the species with the best index, with 99 % using the pretreatment of deionized water at a dose of 0.25 % and for a exposure time of 24 hours, and with 100 % viability using the pretreatment of 10 % sucrose solution at a dose of 0.25 % for 24 hours.
Referencias
Adhikari, H. and Pant, B. (2019). In vitro seed germination and seedling growth of the orchid Dendrobium primulinum Lindl. African Journal of Plant Science, 13(12), 324-331. https://doi.org/10.5897/AJPS2019.1923
Alzate-Q, N. F.; García-Franco, J. G.; Flores-Palacios, A.; Krömer, T. and Laborde, J. (2019). Influence of land use types on the composition and diversity of orchids and their phorophytes in cloud forest fragments. Flora, 260, 151463. https://doi.org/10.1016/j.flora.2019.151463
Bello-Castañeda, N.; Coy-Barrera, C. A. and Pérez, M. M. (2023). Systematic review of types of substrates used in greenhouse propagation of orchids. Mutis, 13(1), 1-18. https://doi.org/10.21789/22561498.1887
Buendía Contreras, J. D.; Moreno Rozo, L. Y. and Salazar Mercado, S. A. (2022). Viability of seeds of two varieties of Coffea arabica L. using different pretreatments in the tetrazolium test. Acta Agriculturae Slovenica, 118(3), 1-6. https://doi.org/10.14720/aas.2022.118.3.2363
Campos-Hermosillo, L. E.; Montero-Cortés, M. I.; Qui-Zapata, J. A.; Castañeda-Nava, J. J. and Gutiérrez-Mora, A. (2022). Effect of pre-germination treatments on pomegranate seed. Revista Mexicana de Agroecosistemas, 9(S1), 11-18. https://revistaremaeitvo.mx/index.php/remae/article/view/52
Catraro, M.; Poggi, D.; Quadrelli, A.; Flores, P. and Gariglio, N. (2022). Adjustment of the topographic viability test by tetrazolium in Poncirus trifoliata (L.) Raf. Revista FAVE Sección Ciencias Agrarias, 21(2), 12005. https://bibliotecavirtual.unl.edu.ar/publicaciones/index.php/FAVEAgrarias/article/view/12005
Chase, M. W.; Cameron, K. M.; Freudenstein, J. V.; Pridgeon, A. M.; Salazar, G.; Van den Berg, C. and Schuiteman, A. (2015). An updated classification of Orchidaceae. Botanical Journal of the Linnean Society, 177(2), 151-174. https://doi.org/10.1111/boj.12234
Díaz-Álvarez, E. A.; Felix, J. D. and de la Barrera, E. (2019). Elemental and isotopic assessment for Colombian orchids from a montane cloud forest: a baseline for global environmental change. Acta Physiologiae Plantarum, 41, 99. https://doi.org/10.1007/s11738-019-2893-y
Flores, A.; Ferrufino, L. and López, V. (2019). Seed viability of lignum vitae (Guaiacum sanctum L., Zygophyllaceae) after two pregerminative treatments. Revista Portal de la Ciencia, 16, 25-37. https://doi.org/10.5377/pc.v0i16.8093
Gil Clavijo, A. I.; Moreno López, J. P. and Banda Sánchez, L. D. C. (2021). Contribución a la conservación de la orquídea Rodriguezia granadensis (Lindl.) Rchb. f. en la hacienda Betania (Fusagasugá, Colombia). Fusagasugá: Editorial de la Universidad de Cundinamarca. https://doi.org/10.36436/9789585195226
IDEAM. (2022). Atlas Climatológico de Colombia. Instituto de Hidrología, Meteorología y Estudios Ambientales (IDEAM), Grupo de Climatología y Agrometeorología; Instituto Geográfico Agustín Codazzi (IGAC), Subdirección de Meteorología Cartográfica. https://www.ideam.gov.co/AtlasWeb/index.html
Kang, H.; Kang, K. W.; Kim, D. H. and Sivanesan, I. (2020). In vitro propagation of Gastrochilus matsuran (Makino) Schltr., an endangered epiphytic orchid. Plants, 9(4), 524. https://doi.org/10.3390/plants9040524
Koene, F. M.; Amano, É.; Smidt, E. D. C. and Ribas, L. L. F. (2020). Asymbiotic germination and morphological studies of seeds of Atlantic Rainforest micro-orchids (Pleurothallidinae). PLoS ONE, 15(12), e0243297. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0243297
Kumar, A.; Chauhan, S.; Rattan, S.; Warghat, A. R.; Kumar, D. and Bhargava, B. (2022). In vitro propagation and phyto-chemical assessment of Cymbidium aloifolium (L.) Sw.: An orchid of pharma-horticultural importance. South African Journal of Botany, 144, 261-269. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2021.06.030
Maharjan, S.; Thakuri, L. S.; Thapa, B. B.; Pradhan, S.; Pant, K. K.; Joshi, G. P. and Pant, B. (2020). In vitro propagation of the endangered orchid Dendrobium chryseum Rolfefrom protocorms culture. Nepal Journal of Science and Technology, 19(1), 39-47. https://doi.org/10.3126/njst.v19i1.29737
Mantovani, C.; Prado, R. M. and Pivetta, K. F. L. (2018). Silicon foliar application on nutrition and growth of Phalaenopsis and Dendrobium orchids. Scientia Horticulturae, 241, 83-92. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2018.06.088
Murashige T. and Skoog, F. (1962) A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15(3), 473-497. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
Portuguez-García, M. P.; Rodríguez-Ruiz, A. M.; Porras-Martínez, C. and González-Lutz, M. I. (2021). Viability of Ischaemum rugosum Salisb. determined by the tetrazolium test. Agronomía Mesoamericana, 32(1), 316-325. https://doi.org/10.15517/am.v32i1.40318
Salazar Mercado, S. A.; Botello Delgado, E. A. and Quintero Caleño, J. D. (2019). Pre-treatments effect on the tetrazolium test on Epidendrum barbaricum Hágsater & Dodson seeds Acta Agronómica, 68(4), 306-311. https://doi.org/10.15446/acag.v68n4.79619
Salazar Mercado, S. A.; Botello Delgado, E. A. and Quintero Caleño, J. D. (2020). Tetrazolium test optimization to evaluate the viability in Solanum lycopersicum L. seeds. Ciencia y Tecnología Agropecuaria, 21(3), e1344.
Salazar Mercado, S. A. and Osorio Jaimes, Y. M. (2022). Inclusion of organic components in culture medium to improve the in vitro propagation of Cattleya warscewiczii and Cattleya gaskelliana. South African Journal of Botany, 148, 352-359. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2022.05.002
Salazar Mercado, S. A.; Quintero Caleño, J. D. and Moreno Rozo, L. Y. (2020a). Improvement of the methodology of the tetrazolium test using different pretreatments in seeds of the genus Epidendrum (Orchidaceae). Journal of Seed Science, 42, e202042013. http://doi.org/10.1590/2317-1545v42231028
Salazar Mercado, S. A.; Quintero Caleño, J. D. and Rojas Suárez, J. P. (2020b). Determining the viability of capsicum annuum L seeds using the tetrazolium test. Aibi Eevista de Investigación, Administración e Ingeniería, 8(3),7-12. https://doi.org/10.15649/2346030X.718
Salazar Mercado, S. A.; Quintero Caleño, J. D. and Rojas Suárez, J. P. (2020c). Optimization of the tetrazolium test in three species of orchids of the Andean forest. Australian Journal of Crop Science, 14(5), 822-830. http://repositorio.ufps.edu.co/handle/ufps/418
Salazar Mercado, S. A. and Vega Contreras, N. A. (2017). Asymbiotic seed germination and in vitro propagation of Cattleya trianae Linden & Reichb.f. (Orchidaceae). Acta Agronómica, 66(4), 544-548. https://doi.org/10.15446/acag.v66n4.63597
Sánchez González, J.; López-Gallego, C. and Benavides Duque, A. M. (2017). Abundancia de tres especies de orquídeas con relación a la humedad ambiental y a la humedad del hospedero en un bosque andino. Orquideología, 34(1), 65-79. https://www.researchgate.net/publication/319632352_Abundancia_de_tres_especies_de_orquideas_con_relacion_a_la_humedad_ambiental_y_a_la_humedad_del_hospedero_en_un_bosque_andino
Silva, E. R.; Simões, I. M.; Baptista, J. O.; Bighi, K. N.; Fontes, M. M. P.; Schmildt, E. R.; Lopes, J. C.; Caldeira, M. V. W. and Alexandre, R. S. (2019). In vitro germination of Melanoxylon brauna Schott. and evaluation of the toxicity of disinfecting agents in the Lactuca sativa L. model plant. Cerne, 25(4), 375-385. https://doi.org/10.1590/01047760201925042688
Utami, E. S. W. and Hariyanto, S. (2019). In vitro seed germination and seedling development of a rare Indonesian native orchid Phalaenopsis amboinensis J.J.Sm. Scientifica, 2019, 8105138. https://doi.org/10.1155/2019/8105138
Vegas García, A.; Molleda, P.; Ortega, D.; Paredes, E.; Gualoto, W.; Quintero, L. and Baque, W. (2019). Effect of sorbitol, mannitol and sucrose in vitro germination of African palm embryos. Revista de la Facultad de Agronomía de La Universidad del Zulia, 36(3), 247-264. https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=7496950
Vudala, S. M.; Padial, A. A. and Ribas, L. L. F. (2019). Micropropagation of Hadrolaelia grandis through transverse and longitudinal thin cell layer culture. South African Journal of Botany, 121, 76-82. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2018.07.017
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