Multiplicación clonal in vivo e in vitro de la especie forestal nativa Aniba perutilis Hemsl.

Clonal multiplication in vivo and in vitro of the native forest species Aniba perutilis Hemsl.

Se desarrolló una metodología para el establecimiento in vitro e in vivo de Aniba perutilis Hemsl. (comino crespo), árbol colombiano en peligro crítico de extinción. En la primera etapa, se sometieron semillas de este árbol a la acción de los desinfectantes NaOCl, HgCl2 y AgNO3 para su germinación aséptica. Para inducir la formación de brotes se empleó el medio WPM y se evaluó la acción de las fitohormonas BAP, KIN, AIA, ANA y AG3 en diferentes concentraciones. Para la etapa de enraizamiento se emplearon ANA, AIB, y los medios de cultivo MS y WPM, ambos con sales reducidas a la mitad y combinados con diferentes concentraciones de AIA y ANA. En la etapa de multiplicación in vivo se emplearon plántulas establecidas en vivero para evaluar tres tamaños de explantes, categorizados según la distancia desde la base de la planta hasta el ápice: distal (11-14 cm), medio (7 - 8 cm) y basal (3 - 4 cm), con el fin de obtener plantas madres donantes de yemas axilares y mini esquejes para enraizar. En este trabajo se consolida el uso de NaOCl por 15 min como tratamiento óptimo de desinfección, produciendo un porcentaje de supervivencia superior a 60%. El medio WPM suplementado con BAP 3 mg/lt y 1.5 mg/lt de AG3 generó la producción de un promedio de 0.6 brotes/explante con longitud media de 0.82 cm; no obstante, su baja capacidad de enraizamiento permite catalogar esta especie como recalcitrante al cultivo in vitro. En condiciones in vivo, cortes a la altura media de las plantas (7 - 8 cm) promovieron la formación de 1.33 brotes/explante y 75% de enraizamiento en los mini-esquejes, constituyendo una herramienta clave en la propagación de la especie

A methodology for the in vitro and in vivo establishment of Aniba perutilis, a native colombian tree which is currently critically endangered, was performed. In the first stage seeds were treated using NaOCl, HgCl2, and AgNO3 to achieve aseptic germination. In order to induce shoot formation, WPM medium was used and phytohormones BAP, KIN, IAA, NAA and GA3 were evaluated at different concentrations. In the rooting stage NAA and IBA were used in different concentrations and culture media, as well as half-strength MS and WPM mediums combined with different concentrations of IAA and NAA. For in vivo multiplication stage, juvenile plants previously established in nursery were used to evaluate three types of cuts defined by the distance between the base of the plant and where the cut was done: distal (11-14 cm), middle (7-8 cm) and basal (3-4 cm), in order to obtain ‘donor plants’ able to donate axillary buds and mini-cuttings for future rooting. The use of NaOCl for 15 minutes consolidates as optimal disinfection treatment, yielding a survival rate greater than 60%. The WPM medium supplemented with BAP (3 mg/L) and GA3 (1.5 mg/L) allowed the production of 0.6 shoots/explant with an average length of 0.82 cm. However, the low rooting capacity of the explants suggests that this species could be labeled as recalcitrant to in vitro culture. In vivo conditions, cuts made at the middle height of the plants promoted the formation of 1.33 shoots/explant and 75% rooting in mini-cuttings, becoming these results in a key tool for the propagation of the species.