Diagnóstico serológico y molecular del Potato leafroll virus (PLRV) en tubérculos-semilla de papa en Antioquia, Colombia
Serological and molecular diagnosis of Potato leafroll virus (PLRV) in potato tuber-seeds in Antioquia, Colombia
DOI:
https://doi.org/10.15446/acag.v65n2.50764Palabras clave:
DAS-ELISA, Detección viral, Polerovirus, RT-qPCR, Solanum phureja, Solanum tuberosum (es)DAS-ELISA, Polerovirus, RT-qPCR, Solanum phureja, Solanum tuberosum, Virus detection (en)
Las virosis son uno de los problemas fitosanitarios más limitantes para la producción de papa, siendo los virus Potato leafroll virus (PLRV), Potato virus Y (PVY), Potato virus S (PVS) y Potato ye-llow vein virus (PYVV) los que generan mayores pérdidas económicas en la región andina. Gene-ralmente estos virus son transmitidos por insectos hemípteros y por tubérculos-semilla. En esta investigación se evaluó la presencia y distribución del PLRV en tubérculos de Solanum tuberosum variedad Diacol-Capiro y S. phureja variedad Criolla-Colombia obtenidos en Antioquia, utilizando pruebas serológicas y moleculares. Mediante DAS-ELISA se evaluaron 128 muestras consisten-tes en tres tipos de tejidos (piel, yemas latentes y brotes), mientras que con RT-PCR en tiempo real (RT-qPCR), se utilizó un subgrupo de 12 muestras de cada variedad. Utilizando DAS-ELISA, el PLRV se encontró en el 3,1% y 10,1% de las muestras de Diacol-Capiro y Criolla-Colombia, respectivamente; siendo evidente una mayor detección del virus en la piel de los tubérculos de ésta última variedad. Las pruebas de RT-qPCR detectaron el PLRV en 83,3% y 91,6% de las 12 muestras de Diacol-Capiro y de Criolla-Colombia, respectivamente; con valores de Ciclo umbral (CT) entre 17,72 y 30,59. La naturaleza de los amplicones obtenidos por RT-qPCR fue confirmada por secuenciación como parte de una región codificante de la cápside del PLRV (Identidad=99%-100%). Estos resultados enfatizan en la necesidad de utilizar tubérculo-semilla certificados por su sanidad viral en los cultivos de papa del país y de fortalecer dichos programas a partir del empleo de técnicas de detección altamente sensibles como RT-qPCR.
Referencias
Agindotan, B.O.; Shiel, P.J.; y Berger, P.H. 2007. Simultaneous detection of potato viruses, PLRV, PVA, PVX and PVY from dormant potato tubers by TaqMan® real-time RT-PCR. J. Virol. Methods. 142:1 – 9.
Almasia, M.A.; Manesh, M.E.; Jafary, H.; Mohammad, S.; y Dehabadia, H. 2013. Visual detection of Potato leafroll virus by loop-mediated isothermal amplification of DNA with the GeneFinderTM dye. J. Virol. Methods. 192: 51– 54.
Alvarez, J.; Cotes, J.M.; y Marín, M. 2011a. Detección de virus asociados al material de siembra de tomate de árbol en Colombia. Rev. Bio. Agro. 9: 43 - 50.
Alvarez, J.; Cotes, J.M.; y Marín, M. 2011b. Detección molecular de virus en material de siembra de tomate de árbol en Colombia. Rev. Protección Veg. 26: 80 - 91.
Bertolini, E.; Moreno, A.; Capote, N.; Olmos, A.; de Luis, A.; Vidal, E.; Pérez-Panadés, J.; y Cambra, M. 2008. Quantitative detection of Citrus tristeza virus in plant tissues and single aphids by Real-time RT-PCR. Eur. J. Plant Pathol. 120:177 - 188.
Bostan, H.; y Haliloglu, K. 2004. Distribution of PLRV, PVS, PVX and PVY (PVYN, PVYo and PVYc) in the seed potato tubers in Turkey. Pak. J. Biol. Sci. 7:1140 - 1143.
Felsenstein, J. 1985. Confidence limits on phylogenies: an approach using the bootstrap. Evo-lution. 39:783-791.
Frost, K.; Groves, R.L.; y Charkowski, A.O. 2013. Integrated control of potato pathogens through seed potato certification and provision of clean seed potatoes. Plant Dis. 97:1268 - 1280.
Gil, J.F.; Cotes, J.M.; y Marín, M. 2011. Incidencia y caracterización molecular del Potato leafroll virus (PLRV) en las principales regiones productoras de papa de Colombia. Fitosanidad. 15:17 – 24.
Guyader, S. y Ducray, D.G. 2002. Sequence analysis of Potato leafroll virus isolates reveals ge-netic stability, major evolutionary events and differential selection pressure between overlapping reading frame products. J. Gen. Virology. 83:1799 - 1807.
Guzmán, M.; Caro, M.; y García, Y. 2004. Validación de la técnica serológica de inmunoimpresión para detección de diferentes virus que afectan el cultivo de papa. I Taller Nacional sobre patógenos del suelo, virus e insectos plaga diferentes a Tecia solanivora, Bogotá, Colombia, p. 41.
Guzmán, M.; Román, V.; Franco, L.; y Rodríguez, P. 2010. Presencia de cuatro virus en algunas accesiones de la Colección Central Colombiana de papa mantenida en campo. Agron. Col. 28:225 – 233.
Hall, T. A. 1999. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis pro-gram for Windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symp. Ser. 41:95 - 98.
Halterman, D.; Charkowski, A.; y Verchot, J. 2012. Potato, viruses, and seed certification in the USA to provide healthy propagated tubers. Pest Techn. 6:1 - 14.
Jaag, H.M.; Kawchuk, L.; Rohde, W.; Fischer, R.; Emans, E.; y Prüfer, D. 2003. An unusual internal ribosomal entry site of inverted symmetry directs expression of a Potato leafroll Polerovirus replication-associated protein. PNAS 100:8939 - 8944.
Kerlan, C. 2008. Potato viruses. En: Brian W. Mahy y Marc H. van Regenmortel (eds.). Desk encyclopedia of plant and fungal virology. Oxford, Reino Unido. Academic Press. p. 458-471.
Khouadja, F.D.; Rouzé-Jouan, J.; Guyader, S.; y Fakhfakh, H. 2014. Possible correlations be-tween the characteristics of Potato leafroll virus isolates occurring in different geograph-ical regions in Tunisia. Phytoparasitica. 42: 259 – 267.
Larkin, M.A.; Blackshields, G.; Brown, N.P.; Chenna, R.; McGettigan, P.A.; y McWilliam, H. 2007. Clustal W and Clustal X version 2.0. Bioinformatics. 23:2947 - 2948.
Latvala-Kilby, S.; Aura, J.; Pupola, N.; Hannukkala, A.; y Valkonen, J. 2009. Detection of Potato mop-top virus in potato tubers and sprouts: combinations of RNA2 and RNA3 variants and incidence of symptomless infections. Phytopathology. 99:519 - 531.
Mortimer-Jonesa, S.M.; Jonesa, M.G.K.; Jones, R.A.C.; Thomson, G.; y Dwyera, G.I. 2009. A single tube, quantitative real-time RT-PCR assay that detects four potato viruses simul-taneously. J. Virol. Methods. 161: 289 – 296.
Mumford, R.; Walsh, K.; Barker, I.; y Boonham, N. 2000. Detection of Potato mop top virus and Tobacco rattle virus using a multiplex realtime fluorescent reverse-transcription Poly-merase Chain Reaction assay. Phytopathology. 90:448 - 453.
Nourinejhad, S.; Shams-Bakhsh, M.; Zand, N.; Sokhandan-Bashir, N.; y Pazhouhandeh, M. 2012. Genetic analysis of Iranian population of Potato leafroll virus based on ORF0. Virus Genes 45:567 – 574.
Plchova, H.; Cerovska, N.; Moravec, T.; y Dedic, P. 2009. Molecular Analysis of Potato leafroll virus isolates from the Czech Republic. Virus Genes. 39:153 - 155.
Pooramini, N.; Heydarnejad, J.; y Massumi, H. 2010. Incidence and molecular analysis of Potato leafroll virus in Iran. J. Phytopathol. 158:182 – 185.
Rahman, M.S. y Akanda, A.M. 2010. Effect of PLRV infected seed tuber on disease incidence, plant growth and yield parameters of potato. Bangladesh J. Agric. Res. 35:359 – 366.
Salazar, L.F. 1995. Los virus de la papa y su control, CIP. Lima.
Schena, L.; Nigro, F.; Ippolito, A.; y Gallitelli, D. 2004. Real-time quantitative PCR: a new tech-nology to detect and study phytopathogenic and antagonistic fungi. Eur. J. Plant Pathol. 110: 893 - 908.
Singh, R.P.; Kurz, J.; Boiteau, G.; Bernard, G. 1995. Detection of Potato leafroll virus in single aphids by the Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction and its potential epi-demiological application. J. Virol. Methods. 55:133 -143.
Taliansky, M.; Mayo, M.A.; y Barker, H. 2003. Potato leafroll virus: a classic pathogen shows new tricks. Mol. Plant Pathol. 4:81 - 89.
Tamura, K.; Stecher, G.; Peterson, D.; Filipski, A.; y Kumar, S. 2013. MEGA6: Molecular evolu-tionary genetics analysis. Mol. Biol. Evol. 30:2725 - 2729.
Vásquez, V.; Montero-Astúa, M.; y Rivera, C. 2006. Incidencia y distribución altitudinal de 13 virus en cultivos de Solanum tuberosum (Solanaceae) en Costa Rica. Rev. Biol. Trop. 54: 1135 – 1141.
Wang, B.; Ma, Y.; Zhang, Z.; Wu, Z.; Wu, Y.; Wang, Q.; Li, M. 2011. Review. Potato viruses in China. Crop Prot. 30:1117 – 1123.
Yang, L.; Nie, B.; Liu, J.; y Song, B. 2014. A reexamination of the effectiveness of Ribavirin on eradication of viruses in potato plantlets in vitro using ELISA and quantitative RT-PCR. Am. J. Potato Res. 91:304 - 311.
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