Protocolo para la formación de microtubérculos de ñame (Dioscorea alata L.) en sistema de inmersión temporal
Palabras clave:
microtubérculos, tiempo y frecuencia de inmersión, volumen de medio de cultivo (es)Protocolo para la formación de microtubérculos de ñame (Dioscorea alata L.) en sistema de inmersión temporal
A protocol for yam (Dioscorea alata L.) microtuber formation in temporary immersion system
Manuel Cabrera Jova1 , Rafael Gómez Kosky2, Aymé Rayas Cabrera1, Manuel DeFeria2, Jorge López Torres 2, Milagros Basail Pérez 1, Víctor Medero Vega1
1Instituto Nacional de Investigaciones en Viandas Tropicales (Inivit), Apartado 6, Santo Domingo CP. 53000, Villa Clara, Cuba. mcabrera@inivit.cu2Instituto de Biotecnología de las Plantas, Universidad Central Marta Abreus de Las Villas, carretera a Camajuaní km 5, Santa Clara, Villa Clara, Cuba.
Recibido: junio 10 de 2009 Aprobado: noviembre 10 de 2009
Resumen
Con el propósito de desarrollar un protocolo para la formación de microtubérculos en el clon de ñame Pacala Duclos (Dioscorea alata L.) en sistema de inmersión temporal, que pudiera ser usado como alternativa para la propagación de esta especie, se definieron como objetivos de trabajo determinar el efecto del tiempo y la frecuencia de inmersión, así como la influencia del volumen de medio de cultivo por planta cultivada in vitro. Con el empleo de 15 min de inmersión y una frecuencia de inmersión cada 6 horas, se alcanzaron los mejores resultados en cuanto al número de microtubérculos formados por planta. Con este tiempo y frecuencia de inmersión los microtubérculos presentaron la mayor masa fresca y seca, así como el mayor diámetro. Además, a las 18 semanas de cultivo se obtuvo el mayor número total de microtubérculos por sistema y el mayor número de microtubérculos aprovechables como material vegetal de propagación. En cuanto al volumen de medio de cultivo por planta, con 60 ml de medio de cultivo por planta in vitro se alcanzó el mayor número de microtubérculos aprovechables, los cuales presentaron el contenido más alto de materia seca. Los microtubérculos obtenidos en este tipo de sistema de inmersión temporal presentaron una masa fresca superior a 2,40 gMF, lo cual podría permitir su uso como material de plantación directo a campo.
Palabras clave: microtubérculos, tiempo y frecuencia de inmersión, volumen de medio de cultivo.
Abreviaturas: sistema de inmersión temporal (SIT), gramos de masa fresca (gMF), recipiente de inmersión temporal automatizado (RITA).
Abstract
The following working objectives were defined for developing a protocol for ´Pacala Duclos´ yam clone (Dioscorea alata L.) microtuber formation in temporary immersion systems (TIS): time effect, immersion frequency and culture medium volume influence per in vitro cultivated plant. The results led to defining that the highest performance regarding microtuber number formed per plant was achieved with a 15-minute immersion time and six-hourly immersion frequency; the microtubers presented the greatest dry and fresh weight and largest diameter at such immersion time and frequency. Furthermore, the highest total number of microtubers per system and the largest number of microtubers usable for planting (vegetal propagation) material were obtained after 18 weeks culture. Regarding culture medium volume per plant, the greatest amount of usable microtubers was achieved with 60 ml per in vitro plant, microtubers presenting the highest dry matter content. As microtubers obtained in this type of TIS had fresh weights higher than 2.40 gFW they could be used as direct planting material in field conditions.
Key words: microtuber, immersion and frequency time, culture medium volume
Abbreviations: temporary immersion system (TIS), grams of fresh weight (gFW), automated container for temporary immersion (RITA).
Introducción
Los incrementos en la producción de raíces y tubérculos para el año 2020 se originarán por la demanda de papa y ñame para alimento humano, además de yuca y boniato como alimento animal y para la producción de almidón (Scott et al., 2006).
Las tecnologías de producción de microtubérculos en el cultivo del ñame tienen un gran potencial como alternativa para la propagación en esta especie (Ovono et al., 2007), debido a que se pueden producir sin tener en cuenta la época del año y a que, a diferencia de las plantas in vitro, pueden ser almacenados por un periodo más prolongado de tiempo sin perder su potencial de brotación (Jasik y Mantell, 2000; Mbanaso et al., 2007).
En la especie Dioscorea alata L. los microtubérculos desarrollados en medios de cultivo en estado semisólido han presentado limitaciones tanto para la producción de minitubérculos en la fase de aclimatización, como para la plantación directa en condiciones de campo (Balogun et al., 2006; Chen et al., 2007).
El empleo combinado de medios de cultivo en estado líquido y sistemas de cultivo semiautomatizados han demostrado ser eficientes en la propagación in vitro de muchas especies de plantas (Escalona, 2006; Mehrotra et al., 2007).
Los Sistemas de Inmersión Temporal (SIT) basados en el contacto intermitente del medio de cultivo con los explantes, y en la renovación de la atmósfera interna del frasco de cultivo (Berthouly y Etienne, 2005), han sido utilizados por Jiménez (2005) para producir microtubérculos de papa a gran escala.
Salazar y Hoyos (2007), utilizaron los recipientes de inmersión temporal automatizados (RITA) de 1,0 L de capacidad para la multiplicación y tuberización in vitro de ñame clon Pico de Botella, y aunque alcanzaron mayores tasas de multiplicación y tuberización in vitro comparadas con el sistema de cultivo convencional en medio de cultivo semisólido, sólo lograron obtener 0,85 microtubérculos por planta y estos presentaron una masa fresca promedio de 0,24 gMF, probablemente debido a la capacidad de los frascos de cultivo y a la falta de manejo de los parámetros del sistema de cultivo que regulan las condiciones del mismo.
El objetivo del presente trabajo fue evaluar el efecto del tiempo y la frecuencia de inmersión en la formación de los microtubérculos de ñame en el Sistema de inmersión temporal, así como determinar la influencia del volumen de medio de cultivo por planta cultivada in vitro para establecer un protocolo en este tipo de sistema de cultivo.
Materiales y métodos
La investigación se realizó en el laboratorio de cultivo de tejidos de plantas del Instituto de Investigaciones en Viandas Tropicales (Inivit), ubicado en Santo Domingo, Villa Clara, Cuba, durante el periodo comprendido entre septiembre del 2006 y diciembre del 2008.
Material vegetal
Se emplearon como explantes segmentos nodales de ñame clon Pacala Duclos con una yema axilar en tercer subcultivo, previamente multiplicados en un medio de cultivo compuesto por las sales inorgánicas y vitaminas propuestas por Murashige y Skoog (1962) (MS), suplementadas con cisteína (20 mg.L-1); 30,0 g.L-1 de sacarosa y 5,0 g.L-1 de Agar-E (Biocen).
Sistema de Inmersión Temporal (SIT)
Este tipo de sistema de cultivo estuvo compuesto por dos frascos de cultivo tipo Clearboys (Compañía Nalgene, EE.UU.) de 10,0 L de capacidad, uno para el crecimiento de los segmentos nodales y el otro como reservorio de medio de cultivo. Estos frascos de cultivo se conectaron entre sí por una manguera de silicona de seis milímetros de diámetro mediante conectores que atravesaron la tapa. En la parte interna se colocó una manguera, la cual descendió hasta el fondo en ambos recipientes. El medio de cultivo circuló de un frasco de cultivo a otro en dependencia de la apertura o cierre de dos electroválvulas de tres vías, las cuales estaban conectadas a un temporizador programable para determinar el tiempo y la frecuencia de la inmersión. A la entrada de los frascos de cultivo se colocaron filtros hidrofóbicos (0,22 µm, Midisart 2000, de la compañía Sartorius) para garantizar la esterilidad del aire. La presión del aire de 1,0 kg.cm-2 proveniente de un compresor, fue regulada por un manómetro.
Para la formación de los microtubérculos fueron establecidas dos fases de cultivo:
En la fase de crecimiento de las plantas, a partir de los segmentos nodales, se utilizó el medio de cultivo basal MS con 30,0 g.L-1 de sacarosa y un régimen de fotoperiodo de 16 horas luz a una densidad de flujo de fotones fotosintéticos (FFF) de 42,0-48,0 µmol.m-2.s-1 y a una temperatura de 25±2,0 °C. Los segmentos nodales para el crecimiento de las plantas fueron cultivados en el SIT, en cada uno de ellos fueron colocados 100 segmentos nodales y un volumen de 30 mL de medio de cultivo por segmento nodal, y se utilizó un tiempo de inmersión de 10 min y una frecuencia de inmersión cada 3 horas (8 inmersiones por día) según resultados previos no mostrados en este trabajo. Esta fase tuvo un periodo de duración de 6 semanas de cultivo.
En la fase de formación de los microtubérculos se utilizó el medio de cultivo basal MS con 100 g.L-1 de sacarosa, y se cultivó en la oscuridad a temperatura de 23±2,0 °C. Cada SIT tenía 100 plantas in vitro y se colocó un volumen de 30 mL de medio de cultivo por planta in vitro, para un volumen total de 3000 mL de medio de cultivo (excepto en el experimento donde se realizó ese estudio). Esta fase se desarrolló durante un periodo de 18 semanas de cultivo.
Efecto del tiempo de inmersión en la formación de los microtubérculos
Con el objetivo de evaluar el efecto del tiempo de inmersión en la fase de formación de los microtubérculos de ñame se evaluaron cuatro tiempos de inmersión: 10,0, 15,0, 20,0 y 25,0 min cada 3 horas (8 inmersiones por día).
Efecto de la frecuencia de inmersión en la formación de los microtubérculos
Con el objetivo de evaluar el efecto de la frecuencia de inmersión en la fase de formación de los microtubérculos de ñame se estudiaron 4 frecuencias de inmersión, cada 3,0; 6,0; 12,0 y 24 horas por día, con el mejor tiempo de inmersión obtenido como resultado en las variables del experimento anterior.
Influencia del volumen del medio de cultivo por planta cultivada in vitro en la formación de los microtubérculos
Este experimento se desarrolló con el objetivo de determinar el efecto del volumen de medio de cultivo en la fase de formación de los microtubérculos. Para el desarrollo del experimento se evaluó el efecto de cuatro volúmenes 15, 30, 60 y 90 mL de medio de cultivo por planta cultivada in vitro.
Se utilizó el mejor tiempo y frecuencia de inmersión obtenidos como resultado para las variables evaluadas en los experimentos anteriores.
Al finalizar la fase de formación de los microtubérculos (18 semanas de cultivo), se seleccionaron al azar 50 plantas por tratamiento, y al momento de la cosecha se contó el número de microtubérculos formados por planta, se determinó la masa fresca (gMF) y la masa seca (gMS) de los microtubérculos en una balanza analítica (Sartorius); antes de determinar la masa seca, los microtubérculos fueron colocados en una estufa (SUTJESKA) a 70 °C durante 48 horas, también se midió el diámetro de los microtubérculos (mm) con un pie de rey.
Además, se contó por tratamiento el número total de microtubérculos formados por frasco de cultivo, el número de microtubérculos aprovechables como material vegetal de propagación (aquellos que presentaron una masa fresca superior a 0,5 gMF, un diámetro superior a los 5,0 mm y no mostraron apariencia acuosa). Se tomó una muestra de 15 microtubérculos aprovechables en cada una de las repeticiones por tratamiento, y se le determinó el contenido de materia seca (%) al multiplicar la masa seca de los mismos por 100 y dividir entre la masa fresca.
Los datos relativos al número de microtubérculos formados por planta, masa fresca, masa seca y diámetro de los microtubérculos fueron analizados estadísticamente mediante una prueba no paramétrica de Kruskall Wallis.
La comparación de las medias del número de microtubérculos total aprovechables, y el contenido de materia seca se realizaron por un análisis de varianza simple y se empleó la prueba de Tukey.
Resultados y discusión
Efecto del tiempo de inmersión en la formación de los microtubérculos
El tiempo de inmersión en el SIT influyó de forma significativa en la formación de los microtubérculos. Con un tiempo de inmersión de 15 min se alcanzaron los mejores resultados para las variables evaluadas, con diferencias significativas respecto al resto de los tratamientos (tabla 1).
Con un tiempo de inmersión de 15 min. se obtuvo a las 18 semanas de cultivo el mayor número total de microtubérculos por SIT y el mayor número de microtubérculos aprovechables como material vegetal de plantación con diferencias significativas respecto al resto de los tiempos de inmersión evaluados (figura 1). Los microtubérculos aprovechables formados en el tiempo de inmersión de 15 min. presentaron, además, el mayor contenido de materia seca con diferencias estadísticas significativas en comparación con los formados en el resto de los tiempos de inmersión (figura 2).
En cuanto al tiempo de contacto del material vegetal con el medio de cultivo, con un tiempo de inmersión de 15 min se obtuvo también mayor posibilidad de que las plantas in vitro asimilaran los nutrientes del medio de cultivo, en comparación con un tiempo de inmersión de 10 min. Este mayor tiempo de contacto de las plantas in vitro con el medio de cultivo propició la mayor acumulación de sustancias de reserva en los microtubérculos, reflejado en los más altos valores para la masa fresca y seca de los mismos. Sin embargo, investigadores como Martre et al. (2001) han descrito que prolongados periodos de inmersión inducen estrés respiratorio y oxidativo en el material vegetal. En sus investigaciones consideraron que un tiempo de contacto del material vegetal con el medio de cultivo de apenas un minuto por encima del tiempo de inmersión, en el cual se logró la mayor tasa de crecimiento relativo de Hevea brasiliensis, fue suficiente como para causar una alta actividad de la superoxidasa dismutasa y de la peroxidación de los lípidos de las membranas provocando daños celulares. Esto debió haber ocurrido en las plantas de ñame cultivadas durante prolongados periodos de inmersión (20 y 25 min), y quizás esta fue la causa de los menores resultados en la formación de los microtubérculos en comparación con un tiempo de inmersión de 15 min, en el cual se obtuvieron la mayor formación de los microtubérculos de ñame y la formación de un mayor número de microtubérculos aprovechables como material vegetal de plantación en comparación con los obtenidos en el resto de los tiempos de inmersión evaluados. Lo anterior demuestra la necesidad de determinar el tiempo de inmersión para cada una de las especies y fases de cultivo en la micropropagación, pues del ajuste del tiempo de inmersión depende en gran medida la eficiencia del empleo de los SIT (Berthouly y Etienne, 2005; Escalona, 2006).
Efecto de la frecuencia de inmersión en la formación de los microtubérculos
En la formación de los microtubérculos, cuando se empleó en el SIT la frecuencia de inmersión cada 6 horas, se obtuvieron los mejores resultados para las variables evaluadas, con diferencias significativas respecto al resto de las frecuencias de inmersión (tabla 2).
Con relación al número total de microtubérculos formados por SIT, y al número de microtubérculos aprovechables como material vegetal de plantación, también se obtuvieron con una frecuencia de inmersión cada 6 horas los mejores resultados, con diferencias significativas respecto al resto de las frecuencias de inmersión evaluadas (figura 3). Los microtubérculos aprovechables formados con una frecuencia de inmersión cada 6 horas presentaron, además, el mayor contenido de materia seca con diferencias estadísticas significativas en comparación con los formados en otras frecuencias de inmersión (figura 4).
Salazar y Hoyos (2007) emplearon, para tuberización de ñame en el sistema de inmersión temporal tipo RITA, una frecuencia de inmersión cada ocho horas obtenida como resultado de la multiplicación de los segmentos nodales. Jiménez (2005), para la producción de microtubérculos de papa en SIT a gran escala, utilizando frasco de cultivo tipo Clearboys de 10,0 L de capacidad, empleó una frecuencia de inmersión cada 3 horas. Con esa frecuencia de inmersión obtuvo el mayor número total de microtubérculos por frasco de cultivo y microtubérculos con diámetro superior a 7,0 mm debido a las favorables condiciones creadas en el interior del recipiente de cultivo. Los resultados del presente trabajo para la tuberización en el cultivo del ñame clon Pacala Duclos no concuerdan con los obtenidos por estos investigadores, lo que demuestra la necesidad de determinar la frecuencia de inmersión para cada una de las especies y fases de cultivo en la micropropagación, pues del ajuste de la combinación del tiempo y la frecuencia de inmersión depende en gran medida la eficiencia del empleo de los SIT (Berthouly y Etienne, 2005).
Influencia del volumen de medio de cultivo por planta cultivada in vitro en la formación de los microtubérculos
En la formación de los microtubérculos se alcanzaron los mejores resultados al emplear un volumen de 60 ó 90 mL de medio de cultivo por planta cultivada in vitro en el SIT, sin diferencias significativas entre ellos para las variables evaluadas, excepto para la masa seca de los microtubérculos, en la cual se presentaron diferencias significativas entre ambos. Las plantas cultivadas en estos volúmenes de medio de cultivo presentaron diferencias significativas respecto a los demás volúmenes empleados (tabla 3).
En cuanto al mayor número de microtubérculos formados por frasco de cultivo de inmersión temporal, con un volumen de 60 ó 90 mL de medio de cultivo por planta in vitro se obtuvieron los mejores resultados a las 18 semanas de cultivo sin diferencias significativas entre ellos, pero sí con respecto al resto de los volúmenes de medio de cultivo por planta in vitro evaluados. El mayor número de microtubérculos aprovechables como material vegetal de plantación se alcanzó con 60 mL de medio de cultivo por planta in vitro cultivada en el SIT, con diferencias significativas respecto al resto de los volúmenes de medio de cultivo evaluados (figura 5).
Los microtubérculos aprovechables obtenidos con el empleo de un volumen de 60,0 mL de medio de cultivo por planta in vitro presentaron el mayor contenido de materia seca con diferencias significativas respecto al resto de los volúmenes evaluados por planta in vitro (figura 6).
Berthouly y Etienne (2005) han señalado que el volumen de medio de cultivo por explante utilizado en los frascos de cultivo de inmersión temporal es uno de los principales factores por evaluar para utilizar eficientemente este tipo de sistema de cultivo. Esto se evidencia en los resultados del presente trabajo para la formación de microtubérculos de ñame en SIT.
Salazar y Hoyos (2007) evaluaron un volumen de 13,3; 20 y 40 ml de medio de cultivo por explante para la tuberización de ñame en el SIT tipo RITA. Ellos obtuvieron los mejores resultados en cuanto al número total y peso fresco promedio de los microtubérculos por frasco de cultivo con 20 y 40 ml de medio de cultivo por explante sin diferencias significativas entre ellos. Aunque dicha investigación se desarrolló en frasco de cultivo de inmersión temporal tipo RITA, apoya los resultados del presente trabajo en cuanto a la necesidad de manejar el volumen de medio de cultivo para la tuberización de ñame en sistemas de cultivo semi-automatizados.
Según Pérez et al. (2001), el volumen de medio de cultivo por planta cultivada influyó en la producción de microtubérculos de papa en SIT. Estos investigadores, con un volumen de 50 mL de medio de cultivo por planta cultivada, propiciaron que en cada inmersión un mayor número de yemas axilares recibieran el estímulo inductor del medio de cultivo. Con ese volumen de medio de cultivo obtuvieron como resultado la formación de 280 microtubérculos por frasco de cultivo.
Piao et al. (2003) también estudiaron cinco diferentes volúmenes de medio de cultivo para la tuberización de la papa en un biorreactor de inmersión temporal y obtuvieron, igualmente, con un volumen de 50 mL de medio de cultivo por planta in vitro, un incremento en la masa fresca de los microtubérculos. Con ese volumen de medio de cultivo por planta cultivada in vitro lograron obtener de los microtubérculos formados un 55% de microtubérculos con una masa fresca superior a 1,0 g. Estos investigadores, cuando emplearon volúmenes superiores de medio de cultivo por explante, evidenciaron la formación de microtubérculos con apariencia acuosa debido a la carencia de oxígeno. Estos resultados apoyan los del presente trabajo para la tuberización in vitro en el cultivo del ñame.
El volumen de medio de cultivo que se debe emplear por esqueje en la tuberización de la papa en inmersión temporal está determinado, según Jiménez (2005), por el volumen del frasco de cultivo, así como por el tiempo y la frecuencia de inmersión empleados. Este investigador empleó un volumen de 75,0 mL de medio de cultivo por esqueje y produjo microtubérculos de papa a gran escala en frasco de cultivo tipo Clearboys de 10,0 L de capacidad.
Conclusiones
Se desarrolló por primera vez un protocolo para la formación de microtubérculos de ñame clon Pacala Duclos en sistema de inmersión temporal conformado por frasco de cultivo de 10 L de capacidad. Se logró la mayor formación de microtubérculos aprovechables como material vegetal de propagación con un tiempo de inmersión de 15 min cada 6 horas y con el empleo de un volumen de 60 ml de medio de cultivo por planta in vitro.
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