Micropropagación y aclimatación de Maguey Pitzometl (Agave marmorata Roezl) en la Mixteca Poblana
Micropropagation and acclimatization of Maguey Pitzometl (Agave marmorata Roezl) in the poblana Mixteca
Micropropagação e aclimatação de Maguey Pitzometl (Agave marmorata Roezl) na Mixteca Poblana
DOI:
https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v20n2.77084Palabras clave:
in vitro, organogénesis, propagación, sustrato (es)in vitro, organogenesis, propagation, substrate (en)
in vitro, organogênese, propagação, substrato (pt)
Agave marmorata R. es una planta que se adapta a terrenos someros y fertilidad baja, también sirve para la retención y conservación de agua de lluvia reduciendo la erosión del suelo. Actualmente se encuentra de forma silvestre y escasa en la Mixteca Poblana (México) donde es intensamente aprovechada en gastronomía y como planta medicinal. Por ello, se propuso la propagación in vitro como estrategia de rescate y conservación a partir de brotes in vitro de Agave marmorata en un medio de cultivo básico de Murashige y Skoog (1962) 100 %, suplementado con azúcar de caña 3 %, myo-inositol 100 mg·L-1, agar 0.7 % y 0.40 mg·L-1 de tiamina-HCl, donde se agregaron por separado diferentes concentraciones de 6-Bencil-adenina (BA) y ácido indol-3-acético (AIA) mediante un arreglo factorial 5x5. Se evaluó el número y longitud de brotes y de raíces obtenidos in vitro. Para las plantas en aclimatación sólo se evaluó el porcentaje de sobrevivencia en diferentes sustratos. Los datos de las variables se sometieron a un análisis de varianza y a una prueba de medias de Tukey (p=0.05). La mejor respuesta para longitud de brotes, número y longitud de raíces fue en el medio MS 100 % adicionando 10 mg·L-1 de AIA y la proliferación de nuevos brotes fue promovida con la adición de BA y AIA en igual concentración. Finalmente, se obtuvo el 100 % de sobrevivencia de las plántulas en los sustratos de peat moss más agrolita y peat moss más arena de río.
Agave marmorata R. is a plant that adapts to shallow lands and low fertility, it also serves for the retention and conservation of rainwater reducing soil erosion. It is currently found in a wild and scarce form in the Mixteca Poblana (Mexico) where it is intensively used in gastronomy and as a medicinal plant. For this reason, in vitro propagation was proposed as a rescue and conservation strategy from in vitro shoots of Agave marmorata in a basic culture medium of Murashige and Skoog (1962) 100 %, supplemented with 3 % sugar cane, myo- inositol 100 mg·L-1, agar 0.7 % and 0.40 mg·L-1 thiamine-HCl, where different concentrations of 6-Benzyl-adenine (BA) and indole-3-acetic acid (IAA) were added separately by a 5x5 factorial arrangement. The number and length of shoots and roots obtained in vitro were evaluated. For the plants in acclimation only the percentage of survival in different substrates was evaluated. Los datos de las variables se sometieron a un análisis de varianza y a una prueba de medias de Tukey (p=0.05). The best response for shoot length, number and length of roots was in the MS 100 % medium adding 10 mg·L-1 of IAA and the proliferation of new shoots was promoted with the addition of BA and IAA in the same concentration. Finally, 100 % survival of the seedlings was obtained in the substrates of peat moss plus agrolita and peat moss plus river sand.
Referencias
Angeles-Espino, A., Valencia-Botín, A. J., Virgen-Calleros, G., Ramírez-Serrano, C., Paredes-Gutiérrez, L., Hurtado-De la Peña, S. (2012) Micropropagación de agave (Agave tequilana Weber. var. Azul) a través de yemas axilares. Tropical and Subtropical Agroecosystems, 15(3), 693-698.
Aureoles-Rodríguez, F., Rodríguez-de la O, J. L., Legaria-Solano, J. P., Sahagún-Castellanos, J., Peña-Ortega, M. G. (2008). Propagación in vitro del maguey bruto (Agave inaequidens Koch), una especie amenazada de interés económico. Revista Chapingo. Serie Horticultura, 14(3), 263-269.
Cruz-García, H., Campos-Ángeles, G. V., Enríquez-del Valle, J. R., Velasco-Velasco, V. A., Rodríguez-Ortiz, G. (2017). Senescencia foliar en plantas micropropagadas de Agave americana durante su aclimatización. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 8(2), 381-391.
Das, T. (1992). Micropropagation of Agave sisalana. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 31, 253-255.
Domínguez, R. M. S., Alpuche, S. A. G., Vasco, M. N. L., Pérez, M. B. E. (2008). Efecto de citocininas en la propagación in vitro de agaves mexicanos. Rev. Fitotec. Mex. 31(4), 317-322.
Enríquez-del Valle, J.R., Carrillo-Castañeda, G., Rodríguez-de la O, J. L. (2005). Sales inorgánicas y ácido indolbutírico en el enraizamiento in vitro de brotes de Agave angustifolia. Rev. Fitotec. Mex. 28(2),175-178.
Enríquez-del Valle, J.R., Antonio-Luis, K. H., Rodríguez-Ortiz, G., Campos-Ángeles, G. V. (2016). Effect of culture medium and incubation on the characteristics of micropropagated agave plants. Cien. Inv. Agr. 43(2), 263-272.
Flores-Maya, S., Vargas-Jurado, M. A., Suárez-Mota, M. E., Barrera-Escorcia, H. (2015). Análisis cariotípico de Agave marmorata y Agave peacockii (Agavaceae) ubicados en las terrazas aluviales del río Zapotitlán, Puebla, México. POLIBOTANICA, ISSN2395-9525, 40: 109-125. DOI: 10.18387/polibotanica.40.7.
García, M. A. J. (2007). Los Agaves de México. Jardín Botánico. Instituto de Biología. Universidad Autónoma de México. México. Revista Ciencias, 87, 14-23.
Garriga, C. M., González, O. G., Alemán, G. S., Abreu, C. E., Quiroz, B. K., Caligari, P. D. S., García-González, R. (2010). Management of auxin-cytokinin interactions to improve micropropagation protocol of henequen (Agave fourcroydes Lem.). Chilean Journal of Agricultural Research 70(4), 545-551.
Granados, S. D. (1993). Los Agaves en México. Universidad Autónoma Chapingo. Chapingo, México. 252 p.
Hazra, S. K., Das, S., Das, A. K. (2002). Sisal plant regeneration via organogénesis. Plant Cell Tiss. Org. Cult., 708(3), 235-240.
Jacques, M. (1988). Multiplicación Vegetativa y Cultivo in vitro. Los Meristemos y la Organogénesis. Mundi-Prensa. Madrid, España. 232 p.
Koné, M., Koné, T., Kouakou, T. H., Konaté, S. J., Ochatt, S. J. S. (2013). Plant regeneration via direct shoot organogénesis from cotyledon explants of Bambara groundnut, Vigna subterranea (L.) Verdc. Revista Biotechnol. Agron. Soc. Environ, 17(4), 584-592.
Luna-Luna, S., Enríquez-del Valle, J. R., Rodríguez-Ortiz, G. (2017). Anatomía y morfología de plantas micropropagadas-aclimatadas de Agave potatorum Zucc. fertirrigadas en vivero. Rev. Fitotec. Mex., 40 (4), 491-494.
Madrigal, L. R., Pineda, F. E. and Rodríguez-de la O, J. L. (1990). Agave. In: handbook of plant cell culture. Ammirato, P. V., Evans, D. A., Sharp, W. R. and Bajaj, Y. P. S. (Eds.) McGraw-Hill Publishing Company. New York, USA. (5):206- 227.
Martínez, A. M., Pacheco, J. C. (2006). Protocolo para la micropropagación de Furcraea macrophylla Baker. Agronomía colombiana, 24(2), 207-213.
Martínez-Ramírez, S., Bautista-Sánchez, G., Pedro-Santos, E. C., Guerrero-Cruz, P. D. (2014). Crecimiento y contenido de clorofila del maguey mezcalero (Agave potatorum Zucc.) en policultivo con maíz y frijol. Revista Fitotecnia Mexicana, 378(3), 297-304.
Luna, M. E. M., Enríquez-del Valle, J. R., Velasco-Velasco, V. A., Villegas-Aparicio, Y., Carrillo-Rodríguez, J. C., Rodríguez-Ortiz, G. (2013). Composición del medio de cultivo y la incubación para enraizar brotes de Agave. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas (Pub. Esp.)6, 1151-1159.
Luna, M. E. M., Enríquez-del Valle, J. R; Velasco-Velasco, V. A; Villegas-Aparicio, Y; Carrillo-Rodríguez, J. C. (2014). Concentración de benciladenina, tipo y dosis de carbohidratos en el medio de cultivo para proliferación de brotes de Agave Americana. Rev. FCA UNCUYO, 46(1), 97-107.
Monja-Mio, K. M., Barredo, P. F., Herrera, H. G., Esqueda, V. M. and Robert, M. L. (2015). Development of the stomatal complex and leaf surface of Agave angustifolia Haw. ‘Bacanora’ plantlets during the in vitro to ex vitro transition process. Scientia Horticulturae, 189, 32-40.
Murashige, T.; Skoog, F. (1962). A revised médium for rapid growth and bioassays with Tobacco Tissue cultures. Physiol. Plant., 15(3), 473- 497.
Nikam, T. D. (1997). High frequency shoot regeneration in Agave sisalana. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 51(3), 225-228.
Pérez Molphe, B. E., Esparza A. M. J. y Pérez R. M. E. (2012) Conservación in vitro de germoplasma de Agave spp. bajo condiciones de crecimiento retardado. Revista Fitotecnia Mexicana, 35(4), 279-287.
Pierik, R. L. M. (1990). Cultivo in vitro de las Plantas Superiores. Mundi-Prensa. Madrid, España. 325 p.
Portillo, M. L., Santacruz-Ruvalcaba, F., Gutiérrez-Mora, A., Rodríguez-Garay, B. (2007). Somatic embryogenesis in Agave tequilaza Weber cultivar Azul. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant, 43(6), 569-575.
Powers, D. E., Backhaus, R. A. (1989). In vitro propagation of Agave arizonica Gentry y Webwer. Plant cell tiss. Org. Cult., 16(1), 57-60.
Reyes-Zambrano, S. J., Lecona-Guzman, C. A., Barredo-Pool, F. A., Ambrosio-Calderón, J. D., Abud-Archila, M., Rincón-Rosales, R., Ruiz-Valdiviezo, V. M., Gutiérrez-Miceli, F. A. (2016). Plant growth regulators optimization for maximize shoots number in Agave americana L. by indirect organogenesis. Gayana Bot., 73(1), 124-131.
Ríos-Ramírez, S. C; Enríquez-del Valle, J. R; Rodríguez-Ortiz, G; Ruíz-Luna, J. (2017). Benzylaminopurine and indol-3-acetic acid concentrations in in vitro proliferation of Agave angustifolia adventitious shoots. Cien. Inv. Agr., 44(3), 285-294.
Robert, M. L., Herrera, J. L., Contreras, F., Scorer, K. N. (1987). In vitro propagation of Agave fourcroydes Lem. (Henequen). Plant Cell Tiss. Org. Cult., 8(1), 37-48.
Rodríguez, G. B., Gutiérrez, M. A., Santacruz, R. F. (1996). Métodos de propagación biotecnológicos y convencionales en agaváceas para zonas áridas. Técnicas convencionales y biotecnológicas para la propagación de plantas de zonas áridas. Santiago (Chile). FAO. pp. 57-86.
Santacruz, R. F., Gutiérrez, P. H., Rodríguez, G. B. (1999). Efficient in vitro propagation of Agave parrasana Berger. Plant Cell Tiss. Org. Cult., 56(3), 163-167.
Santíz, J. A., Rincón-Rosales, R., Gutiérrez-Miceli, F. A. (2012). Propagación in vitro de Agave grijalvensis B. Ullrich, una especie endémica de Chiapas bajo protección especial. Gayana Botánica 69(Número especial): 23-30.
SEMARNAT, Secretaría de Medio Ambiente y Recursos Naturales (2010). Norma Oficial Mexicana NOM-059-SEMARNAT-2010. Protección ambiental-Especies nativas de México de flora y fauna silvestres-Categorías de riesgo y especificaciones para su inclusión, exclusión o cambio. Lista de especies en riesgo. Diario Oficial de la Federación, Segunda Sección. 30 de diciembre de 2010. México, D.F. 78 p.
Siddique, I., Bukhari, N. A. W., Perveen, K., Siddiqui, I. (2015). Influence of Plant Growth Regulators on In Vitro Shoot Multiplication and Plantlet Formation in Cassia angustifolia Vahl. Journal. Braz. Arch. Biol. Technol., 58(5), 686-691.
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CrossRef Cited-by
1. Lourdes Delgado-Aceves, Liberato Portillo, Raquel Folgado, Felipe de Jesús Romo-Paz, María Teresa González-Arnao. (2022). New approaches for micropropagation and cryopreservation of Agave peacockii, an endangered species. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 150(1), p.85. https://doi.org/10.1007/s11240-022-02246-z.
2. Kelly M. Monja-Mio, Diego Olvera-Casanova, Gaston Herrera-Herrera, Miguel Ángel Herrera-Alamillo, Felipe L. Sánchez-Teyer, Manuel L. Robert. (2020). Improving of rooting and ex vitro acclimatization phase of Agave tequilana by temporary immersion system (BioMINT™). In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 56(5), p.662. https://doi.org/10.1007/s11627-020-10109-5.
3. Karen Y. Ruiz‐Mondragón, Anastasia Klimova, Alfonso Valiente‐Banuet, Rafael Lira, Luis E. Eguiarte. (2024). Evolution history and the importance of genomic diversity facing climate change. The case of Agave marmorata Roezl., a microendemic agave used for mezcal production. PLANTS, PEOPLE, PLANET, 6(6), p.1381. https://doi.org/10.1002/ppp3.10532.
4. Mancilla-Álvarez Eucario, Spinoso-Castillo José Luis, Muñoz-Márquez Trujillo Rafael Arturo, Palacios-Pardo Karlo Francisco, Bello-Bello Jericó Jabín. (2024). Temporary immersion bioreactor as an efficient method for in vitro propagation of Agave marmorata. South African Journal of Botany, 169, p.6. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2024.04.011.
5. America Martinez-Rodriguez, Celia Beltran-Garcia, Benjamin Valdez-Salas, Fernando Santacruz-Ruvalcaba, Paolo Di Mascio, Miguel J. Beltran-Garcia. (2022). Micropropagation of Seed-Derived Clonal Lines of the Endangered Agave marmorata Roezl and Their Compatibility with Endophytes. Biology, 11(10), p.1423. https://doi.org/10.3390/biology11101423.
6. José Raymundo Enríquez-Valle, Ilse Lizbeth Chávez-Cruz, Gerardo Rodríguez-Ortiz, Gisela Virginia Campos-Ángeles. (2025). Brotes enraizados de Agave nussaviorum García-Mend. variando sales inorgánicas, AIB e incubación. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 15(8), p.e3205. https://doi.org/10.29312/remexca.v15i8.3205.
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