
Publicado
Fauna críptica del Banco de las Ánimas, Caribe colombiano
Cryptofauna of the Banco de las Ánimas, Colombian Caribbean
DOI:
https://doi.org/10.15446/caldasia.v46n3.102273Palabras clave:
ARMS, biodiversidad, criptofauna (es)ARMS, biodiversity, cryptofauna (en)
Descargas
La criptofauna está conformada por una gran diversidad de filos de Metazoa cuya composición y abundancia varía de acuerdo con distintos factores ambientales, por ello aportan información clave para monitorear ambientes coralinos. Los arrecifes artificiales han sido una herramienta que ha permitido recolectar fauna críptica y aportar información sobre la biodiversidad de los ecosistemas marinos. La criptofauna sésil y móvil, se evaluó en cuatro estructuras autónomas de monitoreo arrecifal ubicadas en noviembre de 2016 en un sector del Banco de las Ánimas a 14 m de profundidad y fueron retiradas a los seis, nueve, doce y 18 meses. Los organismos recolectados fueron identificados hasta el menor nivel taxonómico posible y se analizó su abundancia y variación temporal. La mayor abundancia fue de Arthropoda, Annelida y Mollusca y los filos menos conspicuos fueron los Nemertea y Cnidaria. Los moluscos Parvanachis obesa, Muricopsis cf. withrowi y Anomia ephippium, el anélido Poecilochaetus johnsoni, el artrópodo Balanus y las Ascideas fueron los más frecuentes. La composición del ensamblaje de organismos crípticos fue similar a lo largo del tiempo y fue claro que el asentamiento de larvas dependerá de la identidad de los colonizadores. Este estudio aporta al conocimiento de la diversidad marina del Caribe colombiano y se suma a los inventarios sobre la biodiversidad del Banco de las Ánimas; un corredor biológico entre el Parque Nacional Natural Tayrona y la ciénaga Grande de Santa Marta. Finalmente se recomienda, realizar estudios de larga duración para apreciar patrones de colonización y sucesión de las especies crípticas.
The cryptofauna is made up of a great diversity of Metazoan phyla, whose composition and abundance varies according to different environmental factors, therefore they provide key information to monitor coral environments. Artificial reefs have been a tool that has made it possible to collect cryptic reef fauna and provide information about biodiversity on marine ecosystems. Sessile and mobile cryptofauna was evaluated in four autonomous reef monitoring structures located in November 2016 in a sector of Banco de las Ánimas at a depth of 14 m and were removed at six, nine, twelve, and 18 months. The collected organisms were identified to the lowest possible taxonomic level and their abundance, and temporal variation was analyzed. The highest total abundance was for the Arthropoda, Annelida and Mollusca, and the least conspicuous phyla were Nemertea and Cnidaria. The mollusks Parvanachis obesa, Muricopsis cf. withrowi and Anomia ephippium, the annelid Poecilochaetus johnsoni, the Ascideas and the barnacles from Arthropoda were the most frequent. The composition of the assembly of cryptic organisms was similar over time and it was clear that larvae settlement will depend on the identity of the colonizers. This study, contribute to the knowledge of the marine diversity of the Colombian Caribbean and adds to the inventories on the biodiversity of the Banco de las Animas, an important biological corridor between the Tayrona National Natural Park and the big swamp of Santa Marta. Finally, it is necessary to carry out long-term studies to appreciate patterns of colonization and succession of cryptic species.
Referencias
Anderson M, Gorley R, Clarke K. 2008. PERMANOVA+ for PRIMER: Guide to Software and Statistical Methods. Plymouth, UK: PRIMER-E.
Ardila NE, Hernández-H HA. 2020. Fondos duros y estructuras coralinas en el sector del Banco de las Ánimas. En: García-U R, Acero P A, Zea S, Ardila NE, Hernández-H HA, Cabarcas M, Pineda-Munive EM. El banco de las ánimas: valoración de su biodiversidad (pp. 9 -17). Santa Marta, Colombia: Editorial Unimagdalena.
Arias-Á CA. 2016. Especies de la Familia Columbellidae (Gastropoda) del litoral peruano: Incluyendo nuevas especies. Alemania: EAE.
Benavides-S M, Borrero-P G, Díaz-Sánchez C. 2011. Equinodermos del Caribe colombiano I: Crinoidea, Asteroidea y Ophiuoridea. Santa Marta, Colombia: Serie de Publicaciones Especiales de Invemar 22.
Berlow EL. 1997. From canalization to contingency: historical effects in a successional rocky intertidal community. Ecol. Monogr. 67(4): 435-460. doi: https://doi.org/10.1890/0012-9615(1997)067[0435:FCTCHE]2.0.CO;2
Birkeland C. 1997. Life and death of coral reefs. Nueva York, United States: Chapman and Hall.
Blanco JA, Díaz JM, Ramírez G, Cortés ML. 1994. El Banco de las Ánimas: Una amplia formación arrecifal desarrollada sobre un antiguo delta del Rio Magdalena. Bol. Ecotrópica. 27: 10-18.
Brown CJ. 2005. Epifaunal colonization of the Loch Linnhe artificial reef: influence of substratum on epifaunal assemblage structure. Biofouling. 21: 73-85. doi: https://doi.org/10.1080/08927010512331344197
Bula-M G, Díaz-P G. 1995. Macroalgas del Banco de las Ánimas y nuevos registros para el Caribe colombiano. An. Inst. Invest. Mar. Punta Betín. 24: 173-183.
Carr MH, Hixon MA. 1997. Artificial reefs: the importance of comparisons with natural reefs. Fisheries. 22(4): 28-33. doi: https://doi.org/10.1577/1548-8446(1997)022<0028:ARTIOC>2.0.CO;2
Carter A, Prekel S. 2008. Benthic colonization and ecological successional patterns on a planned nearshore artificial reef system in Broward County, SE Florida. In: ICRS, pp. 1209-1213.
Carvalho S, Moura A, Curdia J, Cancela da Fonseca L, Santos MN. 2013. How complementary are epibenthic assemblages in artificial and nearby natural rocky reefs? Mar. Environ. Res. 92: 170-177. doi: https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2013.09.013
Celis A. 2009. Análisis panbiogeográfico y taxonómico de los cirripedios (Crustacea) de México. [Tesis de doctorado]. [Ciudad de México, México]: Universidad Nacional Autónoma de México.
Chang JJM, Aden YC, Bauman AG, Huang D. 2020. MinION-in- ARMS: Nanopore Sequencing To Expedite Barcoding Of Specimen-Rich Macrofaunal Samples From Autonomous Reef Monitoring Structures. Front. Mar. Sci. 7: 448.
Cifuentes M, Krueger I, Dumont CP, Lenz M, Thiel M. 2010. Does primary colonization or community structure determine the succession of fouling communities? J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 395:10-20. doi: https://doi.org/10.1016/j.jembe.2010.08.019
Cortés ML, Campos NH. 1999. Crustáceos de fondos blandos en la franja costera del departamento del Magdalena, Caribe colombiano. Rev. Acad. Colomb. Ci. Exact. 23(89): 604-614. doi: https://doi.org/10.18257/raccefyn.23(89).1999.2859
David R, Uyarra MC, Carvalho S, Anlauf H, Borja A, Cahill AE, Carugati L, Danovaro R, De Jode A, Feral JP, Guillemain D, Lo Martire M, De Ville D´Avray LT, Pearman JK, Chenuil A. 2019. Lessons from photo analyses of Autonomous Reef Monitoring Structures as tools to detect geographical, spatial, and environmental effects. Mar. Poll. Bull. 141: 420-429. doi: https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2019.02.066
De León-G JA. 2009. Neiridadae. En: De León-G JA, Bastida-Z JR, Carrera-P LF, García-G ME, Peña-R A, Salazar-V, SI, Solís-W V. 2009. Poliquetos (Annelida: Polychaeta) de México y América Tropical. Nuevo León, México: Universidad Autónoma de Nuevo León.
De León-G JA, Bastida-Z, JR, Carrera-P LF, García-G ME, Peña-R A, Salazar-V SI, Solís-W V. 2009. Poliquetos (Annelida: Polychaeta) de México y América Tropical. Nuevo León, México: Universidad Autónoma de Nuevo León.
Díaz JM, Puyana M. 1994. Moluscos del Caribe colombiano: Un Catálogo Ilustrado. Bogotá, Colombia: Colciencias Fundación Natura-Invemar.
Díaz J, Barrios L, Cendales L, Garzón-F J, Geister J, López-V G, Ospina F, Parra-V J, Pinzón B, Vargas-A F, Zapata A, Zea S. 2000. Áreas coralinas de Colombia. Santa Marta, Colombia: Serie Publicaciones Especiales No. 5, INVEMAR.
Dueñas R, Campos NH, Quirós JA. 2012. Los crustáceos decápodos del departamento de Córdoba. Colombia: Académica Española.
Elías R, Méndez N, Muniz P, Cabanillas R, Gutiérrez-R NR, Londoño-M MH, Gárate-C PJ, Cárdenas-C M, Villamar F, Laverde-C JJ, Brauko K, Braga MA, Lana P, Díaz-D O. 2021. Los poliquetos como indicadores biológicos en Latinoamérica y el Caribe . MAFIS. 34(1): 37-107. doi: https://doi.org/10.47193/mafis.3412021010301
Esteban GF, Finlay BJ. 2010. Conservation work is incomplete without cryptic biodiversity. Nature. 463: 293. doi: https://doi.org/10.1038/463293c
Fauchald K, Reimer AA. 1975. Clave de Poliquetos panameños con la inclusión de una clave para todas las familias del mundo. Bol. Inst. Oceanogr. Venez. 14: 71-94.
Franco A. 2005. Oceanografía de la ensenada de Gaira: El Rodadero, más que un centro turístico en el Caribe Colombiano. Santa Marta, Colombia: Universidad Jorge Tadeo Lozano.
García-U, R, Acero P A, Zea S, Ardila NE, Hernández-H HA, Cabarcas M, Pineda-M EM. 2020. El banco de las ánimas: valoración de su biodiversdiad. Santa Marta, Colombia: Editorial Unimagdalena.
Gonzáles-E LE. 2001. Evaluación de los poliquetos neréididos Nereis sp. y Laeonereis culveri (Webster, 1879), como bioindicadores del contenido de materia orgánica en la Bahía de Chetumal, QR. Instituto Tecnológico de Chetumal.
Harris L, León-G J, Salazar-V S. 2009. Morfología, Métodos, Clave para Familias y Calcificación. En: León-G JA, Bastida-Z JR, García-G M, Peña-R A, Salazar-V S, Solís-W VV. (Ed.). Poliquetos (Annelida: Polychaeta) de México y América Tropical. México: Universidad Autónoma de Nuevo León.
Hazeri G, Rahayu DL, Subhan B, Sembiring A, Anggoro AW, Ghozali AT, Madduppa HH. 2019. Latitudinal species diversity and density of cryptic crustacean (Brachyura and Anomura) in micro-habitat Autonomous Reef Monitoring Structures across Kepulauan Seribu, Indonesia. Biodiversitas. 20(5): 1466-1474. doi: https://doi.org/10.13057/biodiv/d200540
Hughes TP, Rodrigues MJ, Bellwood DR, Ceccarelli D, Hoegh-Guldberg O, McCook L, Moltschaniwskyj N, Pratchett MS, Steneck RS, Willis B. 2007. Phase shifts, herbivory, and the resilience of coral reefs to climate change. Curr. Biol. 17(4): 360-365. doi: https://doi.org/10.1016/j.cub.2006.12.049
Hurley KC, Timmers MA, Godwin LS, Copus JM, Skillings DJ, Toonen RJ. 2015. An assessment of shallow and mesophotic reef brachyuran crab assemblages on the south shore of O‘ahu, Hawai‘i. Coral reefs. 35: 103-112. doi: https://doi.org/10.1007/s00338-015-1382-z
Kensley BF, Schotte M. 1989. Guide to the Marine Isopod Crustaceans of the Caribbean. Washington D.C., United States: Smithsonian Press. doi: https://doi.org/10.5962/bhl.title.10375
Knowlton N, Brainard RE, Fisher R, Moews M, Plaisance L, Julian Caley M. 2010. “Coral Reef Biodiversity,” En: A. D. McIntyre. Life in the World’s Oceans: Diversity, Distribution, and Abundance. Scotland,UK: Wiley-Blackwell. doi: https://doi.org/10.1002/9781444325508.ch4
Kohler KE, Gill SM. 2006. Coral Point Count with Excel extensions (CPCe): A Visual Basic program for the determination of coral and substrate coverage using random point count methodology. Comp. Geos. 32: 1259-1269. doi: https://doi.org/10.1016/j.cageo.2005.11.009
Kotb M MA. 2013. Coral colonization and fish assemblage on an artificial reef off Hurghada, Red Sea, Egypt. Egypt. J. Aquat. Biol. Fish. 17(4): 71-81. doi: https://doi.org/10.21608/ejabf.2013.2187
LeCRoy SE. 2000. An illustrated identification guide to the nearshore marine and estuarine gammaridean amphipoda of Florida. Families Gammaridae, Hadziidae, Isaeidae, Melitidae and Oedicerotidae, vol. 1. Tallahassee, United States: Department of Environmental Protection.
Leray M, Knowlton N. 2015. DNA barcoding and metabarcoding of standardized samples reveal patterns of marine benthic diversity. Proc. Natl. Acad. Sci USA. 112(7): 2076-2081. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.1424997112
Navas R, Acosta A, Sánchez L, González J, Ontiveros M, Rodríguez-R JA, Obando P. 2017. Caracterización del ecosistema asociado al sector de las Ánimas, departamento del Magdalena. Anexo 4. Convenio de Coop eración N. 005-2016-PNSA-Invemar.
Pamintuan IS, Aliño PM, Gomez ED, Rollon RN. 1994. Early successional patterns of invertebrates in artificial reefs established at clear and silty areas in Bolinao, Pangasinan, Northern Philippines. Bull. Mar. Sci. 52(2-3): 867-877.
Pearman JK, Anlauf H, Irigoien X, Carvalho S. 2016. Please mind the gap e Visual census and cryptic biodiversity. Mar. Environ. Res. 118: 20-30. doi: https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2016.04.011
Pearman JK, Chust G, Aylagas E, Villarino E, Watson JR, Chenuil A, Borja A, Cahill AE, Carugati L, Danovaro R, David R, Irigoien X, Mendibil I, Moncheva S, Rodríguez-E N, Uyarra MC, Carvalho S. 2020. Pan-regional marine benthic cryptobiome biodiversity patterns revealed by metabarcoding Autonomous Reef Monitoring Structures. Mol. Ecol. 29(24): 4882-4897. doi: https://doi.org/10.1111/mec.15692
Perkol-F S, Benayahu Y. 2004. Community structure of stony and soft coral son vertical unplanned artificial reefs in Eliat (Red Sea): comparision to natural reefs. Coral Reefs. 23:195-205. doi: https://doi.org/10.1007/s00338-004-0384-z
Plaisance L, Caley MJ, Brainard RE, Knowlton N. 2011. The diversity of coral reefs: what are we missing? PLoS ONE. 6 (10): e25026. doi: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0025026
Ransome E, Geller JB, Timmers M, Leray M, Mahardini A, Sembiring A, Collins AG, Meyer C. P. 2017. The importance of standardization for biodiversity comparisons: A case study using autonomous reef monitoring structures (ARMS) and metabarcoding to measure cryptic diversity on Mo’orea coral reefs, French Polynesia. PLoS ONE. 12(4): e0175066. doi: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0175066
Rivolta A, Rodríguez C, Rodríguez J, Molins L. 2015. Criptofauna asociada a colonias muertas de Orbicella annularis en el parque nacional San Esteban, Venezuela. Bol. Inst. Oceanogr. Venez. 54(2): 191-200.
Rocha R M, Zanata TB, Moreno TR. 2012. Keys for the identificationof families and genera of Atlantic shallow water ascidians. Biota Neotrópica. 12(1): 1-35. doi: https://doi.org/10.1590/S1676-06032012000100022
Romero-M PE, Polanía J. 2008. Sucesión temprana de la taxocenosis Mollusca-Annelida-Crustacea en raíces sumergidas de mangle rojo en San Andrés Isla, Caribe colombiano. Rev. Biol. Mar. Oceanogr. 43(1): 63-74. doi: https://doi.org/10.4067/S0718-19572008000100007
Scheffers SR, de Goeij J, van Duyl FC, Bak RPM. 2003. The cave-profiler: a simple tool to describe the 3D structure of inaccessible coral reef cavities. Coral Reefs. 22: 49-53. doi: https://doi.org/10.1007/s00338-003-0285-6
Seaman W, Jensen A. 2000. Purposes and practices of artificial reef evaluation. En: W. Seaman. Artificial Reef Evaluation: with application to natural marine habitats (1-19). United States: CRC Press.
Seaman W. 2000. Artificial Reef Evaluation: With Application to Natural Marine Habitats (Marine science series). United States: CRC Press. doi: https://doi.org/10.1201/9781420036633
Seaman WJ, Sprague LM. 1991. Artificial Habitats for Marine and Freshwater Fisheries. United States: Academic Press Limited.
Soto, AJ, Ponzoni, I, Vazquez, GE. 2006. Análisis numérico de diferentes criterios de similitud en algorítmos de clustering. Mecánica Computacional 25: 993-1011.
Servis JA, Reid BN, Timmers MA, Stergioula V, Naro-M E. 2020. Characterizing coral reef biodiversity: genetic species delimitation in brachyuran crabs of Palmyra Atoll, Central Pacific. Mitochondrial DNA A DNA Mapp Seq Anal. 31(5): 1-12. doi: https://doi.org/10.1080/24701394.2020.1769087
UebeLacker JM, Johnson PG. 1984. Taxonomic guide to the pollychaetes of the northern gulf of México. Mobile, United States: Minerals management service U.S. Department of interior.
Vivier B, Dauvin JC, Navon M, Rusig AM, Mussio I, Orvain F, Boutouil M, Claquin P. 2021. Marine artificial reefs, a meta-analysis of their design, objectives and effectiveness. Glob Ecol. Conserv. 27: e01538 doi: https://doi.org/10.1016/j.gecco.2021.e01538
Wedler E. 2017. Hidroides del Mar Caribe con énfasis en la región de Santa Marta, Colombia. Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras –INVEMAR. Santa Marta, Colombia: Serie de Publicaciones generales del INVEMAR No 94.
Williams AB. 1984. Shrimps, lobsters, and crabs of the Atlantic coast of the eastern United States Maine to Florida. Washington, D. C. United States: Smithsonian institution Press.
Winfield I, Escobar-B E. 2007. Anfípodos (Crustacea: Gammaridae) del sector norte del mar Caribe: listado faunístico, registros nuevos y distribución espacial. Rev.Mex. Biodivers. 78:51-61.
Zea S, Bernal G, López G, García-U R. 2019. Arrecifes de arenisca en el golfo de Salamanca, plataforma continental el Caribe colombiano. Bol. Invest. Mar. Cost. 48(1): 153-158. doi: https://doi.org/10.25268/bimc.invemar.2019.48.1.762
Zimmerman TL, Martin JW. 2004. Artificial reef matrix structures (ARMS): an inexpensive and effective method for collecting coral reef-associated invertebrates. Gulf Caribb. Res. 16(1): 59-64. doi: https://doi.org/10.18785/gcr.1601.08
Cómo citar
APA
ACM
ACS
ABNT
Chicago
Harvard
IEEE
MLA
Turabian
Vancouver
Descargar cita
Licencia

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
Aquellos autores/as que tengan publicaciones con esta revista, aceptan los términos siguientes:
- Los autores/as conservarán sus derechos de autor y garantizarán a la revista el derecho de primera publicación de su obra, el cual estará simultáneamente sujeto a la Licencia de reconocimiento de Creative Commons que permite a terceros compartir la obra siempre que se indique su autor y su primera publicación esta revista.
- Los autores/as podrán adoptar otros acuerdos de licencia no exclusiva de distribución de la versión de la obra publicada (p. ej.: depositarla en un archivo telemático institucional o publicarla en un volumen monográfico) siempre que se indique la publicación inicial en esta revista.
- Se permite y recomienda a los autores/as difundir su obra a través de Internet (p. ej.: en archivos telemáticos institucionales o en su página web) antes y durante el proceso de envío, lo cual puede producir intercambios interesantes y aumentar las citas de la obra publicada. (Véase El efecto del acceso abierto).