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Histología del tracto reproductor masculino del chinche depredador Zelus longipes (Heteroptera: Reduviidae)
Histology of the male reproductive tract of the assassin bug Zelus longipes (Heteroptera: Reduviidae)
DOI:
https://doi.org/10.15446/caldasia.v43n1.85745Palabras clave:
agroecosistemas, Hemiptera, morfología, reproducción (es)agroecosystems, Hemiptera, morphology, reproduction (en)
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Reduviidae incluye el mayor número de especies de depredadores terrestres del Orden Hemiptera, incluyendo depredadores de potenciales plagas en los agroecosistemas. A pesar de la gran cantidad de estudios sobre la taxonomía y morfología del grupo, su filogenia y estrategias reproductivas aún no han sido totalmente dilucidadas. En este trabajo, la histología del tracto reproductivo masculino de Zelus longipes fue descrita con el objetivo de incrementar las fuentes de caracteres para estudios de biología reproductiva del grupo. Para esto fueron utilizadas técnicas de microscopia de luz. Los machos adultos fueron recolectados directamente en un cultivo de maíz, en el municipio de Rio Paranaíba, Minas Gerais. El sistema reproductor está compuesto por dos testículos, cada uno con siete folículos con quistes en diferentes fases del espermatogénesis, vasos deferentes, vesículas seminales, glándulas accesorias pareadas y lobadas en un ducto eyaculatorio. Cuando los espermatozoides están maduros salen de los testículos agrupados en haces y quedan almacenados en las vesículas seminales. Las glándulas accesorias producen diferentes tipos de secreciones que se unen al esperma para formar el semen. Los conductos deferentes fluyen hacia un solo conducto eyaculador.
Reduviidae comprises the largest number of land predator species of the rder Hemiptera, including predators of potential pests in agroecosystem areas. Despite the large number of taxonomic and morphological studies of the group, its phylogeny and reproductive strategies have not been elucidated. This work presents the male reproductive system morphology and histology of the assassin bug Zelus longipes aiming to increase the character sources for reproductive biology studies of the group. For this, light microscopy techniques were used. The adult males were collected in a corn crop area in Rio Paranaíba, municipality of Minas Gerais, Brazil. The male reproductive system of Z. longipes comprises of a pair of testes, with seven follicles each and cysts at different stages of spermatogenesis, vasa deferentia, two seminal vesicles, pairs of paired and lobed accessory glands, and an ejaculatory duct. When the sperm are mature they leave the testes grouped into bundles and are stored in the seminal vesicles. The accessory glands produce different types of secretions that join the spermatozoa to form the semen. The deferent ducts flow into a single ejaculatory duct.
Referencias
Araújo VA, Moreira J, Lino-Neto J. 2009. Structure and ultrastructure of the spermatozoa of Trypoxylon (Trypargilum) albitarse Fabricius 1804 (Hymenoptera, Apoidea, Crabronidae). Micron. 40(7):719–723. doi: https://doi.org/10.1016/j.micron.2009.05.003
Araújo VA, Báo SN, Moreira J, Neves CA, Lino-Neto J. 2010. Ultrastructural characterization of the spermatozoa of Aethalion reticulatum Linnaeus 1767 Hemiptera: Auchenorrhyncha: Aethalionidae). Micron. 41(4):306–311. doi: https://doi.org/doi.org/10.1016/j.micron.2009.12.001
Araújo VA, Lino-Neto J, Ramalho FS, Zanuncio JC, Serrão JE. 2011. Ultrastructure and heteromoprphism of spermatozoa in five species of bugs (Pentatomidae: Heteroptera). Micron. 42(6):560–671. doi: https://doi.org/10.1016/j.micron.2011.02.001
Araújo VA, Serrão JE, Moreira J, Báo SN, Lino-Neto J. 2012. Ultrastructure of spermatozoa in two solitary bee species with an emphasis on synapomorphic traits shared in the Family Apidae. Microsc. Res. Techniq. 75(1):74–80. doi: https://doi.org/10.1002/jemt.21027
Araújo VA, Oliveira AS, Cortes ICH, Viteri-D J, Dias LG. 2020. Morphology of the male reproductive tract in two species of phytophagous bugs (Pentatomidae: Heteroptera). J. Entomol. Zool. Stud., 8: 1608–1614.
Barth R. 1956. Estudos anatômicos e histológicos sobre a subfamília Triatominae (Heteroptera, Reduviidae). VI parte: Estudo comparativo sobre a espermiocitogênese das espécies mais importantes. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 54(3):599–616. doi: https://doi.org/10.1590/S0074-02761956000300009
Barth R. 1958. Estudos anatômicos e histológicos sobre a subfamília Triatominae (Hemiptera, Reduviidae). IX: Vaso deferente e mesadênias de Triatoma infestans. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 56(1):209–238. doi: https://doi.org/10.1590/S0074-02761958000100011
Berryman AA, Gutierrez AP. 1999. Dynamics of insect predator-prey interactions. En: Huffaker CB, Gutierrez AP, editors. Ecological Entomology. 2 ed. New York, USA: John Wiley & Sons. p. 389–417.
Bommarco R, Miranda F, Bylund H, Björkman C. 2011. Insecticides suppress natural enemies and increase pest damage in cabbage. J. Econ. Entomol. 104(3):782–791. doi: https://doi.org/10.1603/EC10444
Brodeur J, Boivin G. 2006. Trophic and guild interactions in biological control. Netherlands: Springer.
Buschini MLT. 2007. Life-history and sex allocation in Trypoxylon (syn. Trypargilum) lactitarse (Hymenoptera; Crabronidae). J. Zool. Syst. Evol. Res. 45(3):206–213. doi: https://doi.org/10.1111/j.1439-0469.2006.00405.x
Bushrow ES, Fuller CL, Cowan DP, Byrd CA. 2006. Anatomy of the male reproductive system and sperm morphology in the caterpillar-hunting wasp Ancistrocerus antilope (Hymenoptera,Vespidae). Invert. Biol. 125(4):354–362. doi:https://doi.org/10.1111/j.1744-7410.2006.00067.x
Candan S, Ozyurt Koçakoğlu N, Suludere Z. 2018. Morphological and histological structure of the male reproductive system of the water strider Gerris lacustres (Linnaeus 1758) (Gerridae, Heteroptera). Microsc. Res. Tech. 81(7):770–780. doi: https://doi.org/10.1002/jemt.23035
Chen PS. 1984. The functional morphological and biochemistry of insect male acessory glands and their secretions. Ann. Rev. Entomol. 29:233–255. doi: https://doi.org/10.1146/annurev.en.29.010184.001313
Cryan JR, Urban JM. 2012. Higher-level phylogeny of the insect order Hemiptera: is Auchenorryncha really paraphyletic? Syst. Entomol. 37(1):7–21. doi: https://doi.org/10.1111/j.1365-3113.2011.00611.x
Cruz I. c2007. Controle biológico de Pragas na cultura de milho para produção de conservas (minimilho), por Meio de Parasitóides e Predadores. Sete lagoas: EMBRAPA - CNPMS. 45 p. EMBRAPA – CNPMS. Circular Técnica, 91). [Revisada en: 10 Mar 2020]. https://www.embrapa.br/documents/1344498/2767891/controle-biologico-de-pragas-na-cultura-de-milho-para-producao-de-conservas-por-meio-de-parasitoides-e-predadores.pdf/bb67e9d1-38b0-4610-8400-bf1b97016054
Dallacqua RP, Cruz-Landim C. 2003. Ultrastructure of the ducts of the reproductive tract of males of Melipona bicolor Lepeletier (Hymenoptera, Apidae, Meliponini). Anat. Hist. Embryol. 32(5):276–281. doi: https://doi.org/10.1046/j.1439-0264.2003.00484.x
Dallai R, Gottardo M, Beutel RG. 2016. Structure and evolution of insect sperm: New interpretations in the age of phylogenomics. Annu. Rev. Entomol. 61:1–23. doi: https://doi.org/10.1146/annurev-ento-010715-023555
Davey KG. 1958. The migration of spermatozoa in the female of Rhodnius prolixus Stal. J. Exp. Biol. 35:694–701.
Davis NT. 1965. Studies of the reproductive physiology of Cimicidae (Hemiptera) - II. Artificial insemination and the function of the seminal fluid. J. Insect Physiol. 11(3):355–366. doi: https://doi.org/10.1016/0022-1910(65)90083-1
DeBach P, Rose, D. 1991. Biological control by natural enemies. 2. ed. New York: Cambridge University Press.
Freitas S. 1995. Capacidade de predacão, sobrevivência e ciclo biológico do predador Montina confusa (Hem.: Reduviidae) alimentado com lagartas da broca da cana de açúcar. An. Soc. Entom. Bras. 24(2):195–199.
Freitas SPC, Gonçalves TCM, Serrão JE, Santos-Mallet JR. 2007a. Fine structure of the male accessory glands of Triatoma rubrofasciata (De Geer, 1773) (Hemiptera, Triatominae). Microsc. Res. Tech. 70(4):355–360. doi: https://doi.org/10.1002/jemt.20419
Freitas SPC, Santos-Mallet JR, Serrão JE, Lorosa-E S, Gonçalves- T C M. 2007b. Morphometry of the testis follicles in Triatoma rubrofasciata (De Geer, 1773) (Hemiptera, Triatominae). Anim. Biol. 57(4):393–400. doi: https://doi.org/10.1163/157075607782232125
Freitas SPC, Santos-Mallet JR, Costa J, Souza ALB, Serrão JE, Gonçalves TCM. 2008. A comparative study of testis follicles in species of Triatoma (Hemiptera, Triatominae). Anim. Biol. 58(2):227–233. doi: https://doi.org/10.1163/157075608X328062
Freitas SPC, Gonçalves TCM, Serrão JE, Costa J, Santos-Mallet JR. 2010. Male reproductive system structure and accessory glands ultrastructure of two species of Triatoma (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae). Micron 41(5):518–525. doi: https://doi.org/10.1016/j.micron.2010.01.008.
Gillott C. 2003. Male accessory gland secretions: Modulators of female reproductive physiology and behavior. Annu. Rev. Entomol. 48:163–184. doi: https://doi.org/10.1146/annurev.ento.48.091801.112657
Gonçalves TCM, Lent H, Almeida JR. 1987. Estudo anatômico e morfomêtrico dos folículos testiculares de algumas espécies de Triatominae (Hemiptera, Reduviidae). Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 82(4):543–550. doi: https://doi.org/10.1590/S0074-02761987000400012
Grazia J, Cavicchioli RR, Wolff VRS, Fernandes JAM, Takiya DM. 2012. Hemiptera. En: Rafael, JA, Melo GAR, Carvalho CJB, Casari S, editores. Os insetos do Brasil: Diversidade e taxonomia. Ribeirão Preto: Editora Holos. p. 348–405.
Jahnke SM, Redaelli LR, Diefenbach LMG. 2002. Population dynamics of Cosmoclopius nigroannulatus Stal (Hem.; Reduviidae) in tobacco culture. Rev. Bras. Biol. 62(4b):819–826. doi: https://doi.org/10.1590/S1519-69842002000500011
Jahnke SM, Redaelli LR, Diefenbach LMG. 2006. Internal reproductive organs of Cosmoclopius nigroannulatus (Hemiptera: Reduviidae). Braz. J. Biol. 66(2a):509–512. doi: https://doi.org/10.1590/S1519-69842006000300017
Jamieson BGM, Dallai R, Afzelius BA. 1999. Insects: Their spermatozoa and phylogeny. New Hampshire, USA: Enfield. NH: Science Publishers.
Kaur H, Patial N. 2012. Internal male reproductive organs of ten species of Heteroptera (Insecta: Hemiptera). Indian J. Fund. App. Life Sci. 2(1):317–324.
Kaur H, Patial N. 2016. Internal male reproductive organs in five species of Heteroptera (Insecta: Hemiptera). Indian J. Fund. App. Life Sci. 6(3):30–35. Koul O, Dhaliwal GS. 2003. Predators and parasitoids. London: Taylor & Francis.
Li H, Leavengood JM, Chapman EG, Burkhardt D, Song F, Jiang P, Liu J, Zhou X, Cai W. 2017. Mitochondrial phylogenomics of Hemiptera reveals adaptive innovations driving the diversification of true bugs. Proc. R. Soc. 284:20171223. doi: https://doi.org/10.1098/rspb.2017.1223
Li Y, Li Y, Liu Y, Cheng H. 2018. Stability analysis and control optimization of a prey-predator model with linear feedback control. Discrete Dyn. Nat. Soc. 2018:ID4945728. doi: https://doi.org/10.1155/2018/4945728
Lino-Neto J, Dolder H, Mancini K, Mercati D, Dallai R. 2008. The short spermatodesm of Arge pagana (Hymenoptera: Symphyta). Tissue Cell. 40(3):185–193. doi: https://doi.org/doi.org/10.1016/j.tice.2007.11.004
Moreira J, Zama U, Lino-Neto J. 2004. Release, behavior and phylogenetic significance of spermatozoa in bundles in the seminal vesicle during sexual maturation in Aculeata (Hymenoptera). Braz. J. Morphol. Sci. 21(4):185–189.
Moreira PA, Araújo VA, Zama U, Lino-Neto J. 2008. Morphology of male reproductive system in three species of Trypoxylon(Trypargilum) Richards (Hymenoptera: Crabronidae). Neotrop. Entomol. 37(4):429–435. doi: https://doi.org/10.1590/S1519-566X2008000400012
Munhoz ILA, Serrão JE, Dias G, Lino-Neto J, Melo AL, Araújo VA, 2020. Anatomy and histology of the male reproductive tract in giant water bugs of the genus Belostoma Latreille, 1807 (Heteroptera, Belostomatidae). Int. J. Trop. Insect. Sci. 40(2):1608–1614. doi: https://doi.org/10.1007/s42690-020-00207-7
Papacek M, Soldan T. 1992. Development of the male internal reproductive system in Notonecta glauca (Heteroptera, Notonectidae). En: Bennettová, B, Gelbic, I, Soldan, T, editores. Advances in Regulation of Insect Reproduction. Institute of Entomology. České Budějovice: Czech Academy of Science. p. 199–211.
Pendergrast JG. 1957. Studies on the reproductive organs of the Heteroptera with a consideration of their bearing on classification. Trans. R. Entomol. Soc. Lond. 109(1):1–63. doi: https://doi.org/10.1111/j.1365-2311.1957.tb00133.x.
Pires EM, Ferreira PSF, Guedes RNC, Serrão JE. 2007. Morphology of the phytophagous bug Platyscytus decempunctatus (Carvalho) (Heteroptera: Miridae). Neotrop. Entomol. 36(4):510–513. doi: https://doi.org/10.1590/S1519-566X2007000400004.
Quicke DLJ, Ingram SN, Baillie HS, Gaitens PV. 1992. Sperm structure and ultrasctructure in the Hymenoptera (Insecta). Zool. Scr. 21(4):381–402. doi: https://doi.org/10.1111/j.1463-409.1992.tb00339.x
Raina AK, Kingan TG, Giebultowicz JM. 1994. Mating-induced loss of Sex pheromone and sexual receptivity in insects with emphasis on Helicoverpa zea and Lymantra dispar. Arch. Insect Biochem. Phisiol. 25(4):317–327. doi: https://doi.org/10.1002/arch.940250407
Schuh RT, Slater JA. 1995. The bugs of the world (Hemiptera: Heteroptera). Classification and natural history. Ithaca, NY: Cornell University Press.
Symondson WOC, Sunderland KD, Greenstone MH. 2002. Can generalist predators be effective biocontrol agents? Ann. Rev. Entomol. 47:561–94. doi: https://doi.org/10.1146/annurev.ento.47.091201.145240
Triplehorn CA, Johnsons N. 2005. Introduction to the Study of Insects. Belmont, California: Thomson Brooks/Cole.
Weirauch C, Schuh RT. 2011. Systematics and evolution of Heteroptera: 25 years of progress. Annu. Rev. Entomol. 56:487–510. doi: https://doi.org/10.1146/annurev-ento-120709-144833
Zhang Z. 2011. Animal biodiversity: an outline of higher-level classification and survey of taxonomic richness. Zootaxa. 3148: 1–237.
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CrossRef Cited-by
1. Vinícius Albano Araújo, Igor Luiz Araújo Munhoz, José Eduardo Serrão. (2021). Morphology of the male reproductive tract in the water scavenger beetle Tropisternus collaris Fabricius, 1775 (Coleoptera: Hydrophilidae). Revista Brasileira de Entomologia, 65(2) https://doi.org/10.1590/1806-9665-rbent-2021-0012.
2. Snejana Grozeva, Desislava Stoianova, Fedor Konstantinov, Nikolay Simov, Valentina G. Kuznetsova. (2022). A synopsis of the numbers of testicular follicles and ovarioles in true bugs (Heteroptera, Hemiptera) – sixty-five years of progress after J. Pendergrast’s review. ZooKeys, 1136, p.71. https://doi.org/10.3897/zookeys.1136.96431.
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