Publicado
Investigação de Enterobacterales resistentes ao meropenem e produtoras de carbapenemases em uma estação de tratamento de esgoto de Minas Gerais, Brasil
Investigation of meropenem-resistant and carbapenemase-producing Enterobacterales in a sewage treatment plant in Minas Gerais, Brazil
Investigación de Enterobacteriales resistentes a meropenem y productores de carbapenemasas en una planta de tratamiento de aguas residuales en Minas Gerais, Brasil
DOI:
https://doi.org/10.15446/rcciquifa.v54n2.115810Palabras clave:
Bactérias gram-negativas, Meropenem, Estação de tratamento de esgoto, Farmacorresistência bacteriana, Ambiente aquático (pt)Gram-negative bacteria, Meropenem, Sewage treatment station, Bacterial pharmacoresistance, Aquatic environment (en)
Bacterias Gram negativas, Meropenem, Planta de tratamiento de aguas residuales, Farmacorresistencia bacteriana, Ambiente acuático (es)
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Introdução: Bactérias gram-negativas, apesar de ubíquas na natureza, podem causar infecções, desenvolver e disseminar mecanismos de resistência aos antimicrobianos. Destaca-se a resistência antimicrobiana (RAM) a fármacos de relevância clínica como meropenem, para o qual o estudo da resistência em ambientes aquáticos é pouco explorado. Objetivo: Foi investigada a presença de bactérias gram-negativas resistentes ao meropenem (BRM) em uma estação de tratamento de esgoto (ETE) de Minas Gerais, Brasil. Dois litros de esgoto bruto (EB) e de efluente (EF) foram coletados. 100µL de cada amostra foram submetidos à cultura sem e com meropenem (8 µg/mL). Posteriormente, foi realizada diluição seriada e 100 µL de cada diluição inoculados em ágares para a recuperação de Gram-negativas. Os morfotipos foram identificadas utilizando ágar cromogênico e submetidos ao teste de inativação de carbapenêmico na ausência e presença de EDTA (EUCAST, 2017; CLSI, 2022) para a investigação da produção de carbapenemases. Resultados: Um total de 34 morfotipos bacterianos, todos pertenceram à ordem Enterobacteriales (26 Escherichia coli e quatro Enterobacter sp. em EB e quatro E. coli em EF) foram recuperados. Todas as BRM foram produtoras de carbapenemase, a maioria (88,6%) do tipo serinocarbapenemase, enquanto produtora de metalobetalactamase foi exclusivamente encontrada em EB. Conclusão: Apesar da redução dos morfotipos em EF, sua descarga em cursos d’água deve ser considerada um importante meio de veiculação de BRM no ambiente. Nossos dados apontam para a necessidade de mais estudos afim de conhecer e estabelecer estratégias de contenção de disseminação de RAM, incluindo a implementação de mais ETEs.
Introduction: Gram-negative bacteria, despite being ubiquitous in nature, can cause infections and develop and disseminate mechanisms of resistance to antimicrobials. Antimicrobial resistance (AMR) to drugs of clinical relevance such as meropenem stands out, for which the study of resistance in aquatic environments is little explored. Objective: The presence of gram-negative bacteria resistant to meropenem (BRM) was investigated in a sewage treatment plant (WWTP) in Minas Gerais, Brazil. Two liters of raw sewage (RS) and effluent (EF) were collected. 100µL of each sample was subjected to culture without and with meropenem (8 µg/mL). Subsequently, serial dilution was performed and 100 µL of each dilution was inoculated into agars for the recovery of Gram-negatives. The morphotypes were identified using chromogenic agar and subjected to the carbapenem inactivation test in the absence and presence of EDTA (EUCAST, 2017; CLSI, 2022) to investigate the production of carbapenemases. Results: A total of 34 bacterial morphotypes, all belonging to the order Enterobacteriales (26 Escherichia coli and four Enterobacter sp. in RS and four E. coli in EF) were recovered. All BRM were carbapenemase producers, the majority (88.6%) of the serinecarbapenemase type, while metallobetalactamase producers were exclusively found in RS. Conclusion: Despite the reduction of morphotypes in RS, its discharge into waterways must be considered an important means of transporting BRM in the environment. Our data point to the need for more studies to understand and establish strategies to contain the spread of AMR, including the implementation of more WWTPs.
Introducción: Las bacterias gramnegativas, a pesar de ser ubicuas en la naturaleza, pueden causar infecciones y desarrollar y difundir mecanismos de resistencia a los antimicrobianos. Destaca la resistencia antimicrobiana (RAM) a fármacos de relevancia clínica como meropenem, por lo que el estudio de resistencia en ambientes acuáticos está poco explorado. Objetivo: Se investigó la presencia de bacterias gramnegativas resistentes a meropenem (BRM) en una planta de tratamiento de aguas residuales (PTAR) en Minas Gerais, Brasil. Se recogieron dos litros de aguas residuales (AR) y efluentes (EF). Se sometieron a cultivo 100 µL de cada muestra con y sin meropenem (8 µg/mL). Posteriormente se realizaron diluciones seriadas y se inocularon 100 µL de cada dilución en agares para la recuperación de Gram negativos. Los morfotipos se identificaron utilizando agar cromogénico y se sometieron a la prueba de inactivación de carbapenems en ausencia y presencia de EDTA (EUCAST, 2017; CLSI, 2022) para investigar la producción de carbapenemasas. Resultados: Se recuperaron un total de 34 morfotipos bacterianos, todos pertenecientes al orden Enterobacteriales (26 Escherichia coli y cuatro Enterobacter sp. en AR y cuatro E. coli en EF). Todos los BRM fueron productores de carbapenemasas, la mayoría (88,6%) del tipo serinacarbapenemasas, mientras que los productores de metalobetalactamasas se encontraron exclusivamente en AR. Conclusión: A pesar de la reducción de morfotipos en AR, su descarga a vías fluviales debe considerarse un medio importante de transporte de BRM en el medio ambiente. Nuestros datos apuntan a la necesidad de realizar más estudios para comprender y establecer estrategias para contener la propagación de la resistencia a los antimicrobianos, incluida la implementación de más PTAR.
Referencias
1. Y. Cag, H. Caskurlu, Y. Fan, B. Cao & H. Vahaboglu. Resistance mechanisms. Ann. Transl. Med., 4(17), 326–326 (2016). Doi: https://doi.org/10.21037/atm.2016.09.14
2. M. Tallat, D. Gurala, S. Amarnath, M. Alsheikh, A. Sharma, Y. Eldouaihy, et al. S2387: The connections you don’t want to make: A rare case of atrio-esophageal fistula formation after thermal ablation for atrial fibrillation. Am. J. Gastroenterol., 117(10S), e1598 (2022). Doi: https://doi.org/10.14309/01.ajg.0000866188.91519.f7
3. L. Carrara da Silva, A. Machado-Cardoso & J.M.B. Dias-Vieira. Dispersão da resistência a antimicrobianos no ambiente sob o conceito de Saúde Única. Concilium, 22(6), 937–948 (2022). URL: https://www.academia.edu/93419422/Dispers%C3%A3o_da_resist%C3%AAncia_a_antimicrobianos_no_ambiente_sob_o_conceito_de_Sa%C3%BAde_%C3%9Anica
4. A. Versporten, P. Zarb, I. Caniaux, M.F. Gros, N. Drapier, M. Miller, et al. Antimicrobial consumption and resistance in adult hospital inpatients in 53 countries: Results of an internet-based global point prevalence survey. Lancet Glob. Health, 6(6), e619–e629 (2018). Doi: https://doi.org/10.1016/S2214-109X(18)30186-4
5. S. Naidoo & A.O. Olaniran. Treated wastewater effluent as a source of microbial pollution of surface water resources. Int. J. Environ. Res. Public Health, 11(1), 249–270 (2013). Doi: https://doi.org/10.3390/ijerph110100249
6. C. Pal, J. Bengtsson-Palme, E. Kristiansson & D.G.J. Larsson. Co-occurrence of resistance genes to antibiotics, biocides and metals reveals novel insights into their co-selection potential. BMC Genomics, 16(1), 964 (2015). Doi: https://doi.org/10.1186/s12864-015-2153-5
7. L.G. Pinheiro. Metagenômica de microrganismos aquáticos como ferramenta para a análise da saúde coletiva no semiárido. Trabalho de conclusão de curso. Universidade Federal do Rio Grande do Norte - UFRN, Natal (RN), Brasil, 2017; 22 p. URL: https://repositorio.ufrn.br/handle/123456789/47328
8. Brasil, Agência Nacional de Vigilância Sanitária (ANVISA). Microbiologia Clínica para o Controle de Infecção Relacionada à Assistência à Saúde. Módulo 4: Procedimentos Laboratoriais: Da Requisição do Exame à Análise Microbiológica e Laudo Final. Brasilia DF, 2013; 100 p. URL: https://www.gov.br/anvisa/pt-br/centraisdeconteudo/publicacoes/servicosdesaude/publicacoes/modulo-4-procedimentos-laboratoriais-da-requisicao-do-exame-a-analise-microbiologica-e-laudo-final
9. P.D. Tamma, S.E. Cosgrove & L.L. Maragakis. Combination therapy for treatment of infections with Gram-negative bacteria. Clin. Microbiol. Rev., 25(3), 450–470 (2012). Doi: https://doi.org/10.1128/cmr.05041-11
10. Y. Wang, M.-K. Tong, K.-H. Chow, V.Ch.-Ch. Cheng, C.W.-S. Tse, A.K.-L. Wu, R.W.-M. Lai, W.-K. Luk, D.N.-Ch. Tsang & P.-L. Ho. Occurrence of highly conjugative IncX3 epidemic plasmid carrying blaNDM in Enterobacteriaceae isolates in geographically widespread areas. Front. Microbiol., 9, 2272 (2018). Doi: https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.02272
11. W.G. Lima, F.J.d. Santos, A.C. Soares, F.A. Macías, J.M.G. Molinillo, J.M.S. Ferreira & J.M.d. Siqueira. Synthesis and antimicrobial activity of some benzoxazinoids derivatives of 2-nitrophenol and 3-hydroxy-2-nitropyridine. Synth. Commun., 49(2), 286–296 (2019). Doi: https://doi.org/10.1080/00397911.2018.1554146
12. D. Duin & Y. Doi. The global epidemiology of carbapenemase-producing Enterobacteriaceae. Virulence, 8(4), 460–469 (2016). Doi: https://doi.org/10.1080/21505594.2016.1222343
13. M. Asif, I.A. Alvi & S.U. Rehman. Insight into Acinetobacter baumannii: Pathogenesis, global resistance, mechanisms of resistance, treatment options, and alternative modalities. Infect. Drug Resist., 11, 1249–1260 (2018). Doi: https://doi.org/10.2147/IDR.S166750
14. M. Lopes-Araujo. Genotipagem de β–lactamases de espectro estendido (ESBL) em cepas de Escherichia coli uropatogênica isoladas de pacientes no Hospital Regional de Ceilândia. Trabalho de Conclusão de Curso. Universidade de Brasília, Brasília, DF, 2017; 31 p. URL: https://bdm.unb.br/handle/10483/23935
15. A.M. Queenan & K. Bush. Carbapenemases: The versatile β-lactamases. Clin. Microbiol. Rev., 20(3), 440–458 (2007). Doi: https://doi.org/10.1128/cmr.00001-07
16. C.P. Oplustil, C.M. Zoccoli, N.R. Tobouti & M.C. Scheffer. Procedimentos Básicos em Microbiologia Clínica. 4a edición. Sarvier, São Paulo (SP), 2019.
17. R.P. Ambler. The structure of beta-lactamases. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B: Biol. Sci., 289(1036), 321–331 (1980). Doi: https://doi.org/10.1098/rstb.1980.0049
18. B.A. Evans & S.G.B. Amyes. OXA β-lactamases. Clin. Microbiol. Rev., 27(2), 241–263 (2014). Doi: https://doi.org/10.1128/cmr.00117-13
19. M. Cantisani, E. Finamore, E. Mignogna, A. Falanga, G.F. Nicoletti, C. Pedone, et al. Structural insights into and activity analysis of the antimicrobial peptide myxinidin. Antimicrob. Agents Chemother., 58(9), 5280–5290 (2014). Doi: https://doi.org/10.1128/aac.02395-14
20. H. Akiba & K. Tsumoto. Expression in Bacteria and Refolding. In: T. Senda & K. Maenaka (editors). Advanced Methods in Structural Biology. Springer Protocols Handbooks. Springer, Tokyo, 2016; pp. 3–23. Doi: https://doi.org/10.1007/978-4-431-56030-2_1
21. V.P. Prabhasankar, D.I. Joshua, K. Balakrishna, I.F. Siddiqui, S. Taniyasu, N. Yamashita, et al. Removal rates of antibiotics in four sewage treatment plants in South India. Environ. Sci. Pollut. Res. 23(9), 8679–8685 (2016). Doi: https://doi.org/10.1007/s11356-015-5968-3
22. J.A. Abrantes. Avaliação da resistência bacteriana em Estações de Tratamento de Esgoto da Fiocruz com ênfase no perfil fenotípico e molecular para betalactamases em enterobactérias. Tese do Doutorado em Saúde pública e meio ambiente. Escola Nacional de Saúde Pública Sergio Arouca, Fundação Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 2022; 116 f. URL: https://bdtd.ibict.br/vufind/Record/CRUZ_64b536c68207ab2f961329aeccea0762
23. D. Rodríguez-Lázaro, E.-A. Oniciuc, P.G. García, D. Gallego, I. Fernández-Natal, M. DominguezGil, et al. Detection and characterization of Staphylococcus aureus and methicillin-resistant S. aureus in foods confiscated in EU borders. Front. Microbiol., 8, 1344 (2017). Doi: https://doi.org/10.3389/fmicb.2017.01344
24. K. KuKanich, A. Burklund, R. McGaughey, N. Muturi, S. Thomason, M.M. Chengappa, et al. One health approach for reporting veterinary carbapenem-resistant enterobacterales and other bacteria of public health concern. Emerg. Infect. Dis., 29(6), 1–9 (2023). Doi: https://doi.org/10.3201/eid2906.221648
25. M.C. Paiva, M.P. Reis, P.S. Costa, M.F. Dias, L. Bleicher, L.L.S. Scholte, et al. Identification of new bacteria harboring qnrS and aac(6′)-Ib/cr and mutations possibly involved in fluoroquinolone resistance in raw sewage and activated sludge samples from a full-scale WWTP. Water Res., 110, 27–37 (2017). Doi: https://doi.org/10.1016/j.watres.2016.11.056
26. Brazilian Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing, BrCAST. Comitê Brasileiro de Teste de Sensibilidade aos Antimicrobianos, Rio de Janeiro (RJ), 2023. URL: https://brcast.org.br/documentos/documentos-3/
27. E.W. Koneman, S.D. Allen, W.M. Janda, P.C. Schreckenberger & W.C. Winn. Diagnóstico Microbiológico: Texto e Atlas Colorido. 6 ª edição, Guanabara Koogan, Rio de Janeiro, 2008; pp. 617–665.
28. D.A. Mossel & L. Indacochea. A new cetrimide medium for the detection of Pseudomonas aeruginosa. J. Med. Microbiol., 4(3), 380–382 (1971). Doi: https://doi.org/10.1099/00222615-4-3-380
29. T.R. Oberhofer. Cultural and biochemical characteristics of clinical isolates of unusual colistin-resistant pseudomonads. J. Clin. Microbiol., 12(2), 156–160 (1980). Doi: https://doi.org/10.1128/jcm.12.2.156-160.1980
30. EUCAST. Breakpoint Tables for Interpretation of MICs and Zone Diameters, Version 7.0, 2017. URL: http://www.eucast.org/clinical_breakpoints/
31. CLSI. A. Goodwin & M.A. Wikler. CLSI M23 Development of in vitro susceptibility test methods, breakpoints, and quality control parameters. 6th edition. Clinical and Laboratory Standards Institute, Wayne (PA), 2023. URL: https://clsi.org/shop/standards/m23/
32. E. Oliveira de Oliveira & C.L. Banaszeski. A logística reversa no descarte de medicamentos. Saúde e Desenvolvimento, 10(18), 21–37 (2021). URL: https://cadernosuninter.com/index.php/saude-edesenvolvimento/article/view/1068
33. E. Felis, J. Kalka, A. Sochacki, K. Kowalska, S. Bajkacz, M. Harnisz, et al. Antimicrobial pharmaceuticals in the aquatic environment - occurrence and environmental implications. Eur. J. Pharmacol., 866, 172813 (2020). Doi: https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2019.172813
34. P. Kovalakova, L. Cizmas, T.J. McDonald, B. Marsalek, M. Feng & V.K. Sharma. Occurrence and toxicity of antibiotics in the aquatic environment: A review. Chemosphere, 251, 126351 (2020). Doi: https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2020.126351
35. M.C. Paiva, M.P. Ávila, M.P. Reis, P.S. Costa, R.M. Nardi & A.M. Nascimento. The microbiota and abundance of the Class 1 Integron-Integrase Gene in tropical sewage treatment plant influent and activated sludge. PLoS One, 10(6), e0131532 (2015). Doi: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0131532.
36. E.C. Machado, C.D. Leal, B. Lopes-Coelho, C.A. de Lemos-Chernicharo & J. Calábria de Araujo. Detecção e quantificação de bactérias resistentes aos antibióticos ampicilina e cloranfenicol em estações de tratamento de esgoto doméstico. Engenharia Sanitaria e Ambiental, 25(6), 847–857 (2020). Doi: https://doi.org/10.1590/S1413-4152202020180001
37. E.T. Abreu, J.A. Pretto, Â.d. Oliveira-Caleare, C.R.G. Tavares & C.V. Nakamura. Avaliação da resistência a antibióticos de bactérias isoladas de efluente hospitalar. Acta Scientiarum. Technology (Maringá), 32(1), 1–5 (2010). URL: https://www.redalyc.org/pdf/3032/303226525005.pdf
38. A. Portela de Azevedo, D.T. de Sousa-Marinho, E. Rodrigues da Conceição, D. Barbosa, S. GomesFaria, J. da Silva-Nascimento, M.d.O. Lima-Neves, T. Vieira da Silva, I. Oliveira da Fonseca & G. Nascimento-Lima. Pseudomonas aeruginosa: Perfil de resistência antimicrobiana e principais sítios de infecção de amostras colhidas de pacientes imunossuprimidos. Revista Feridas, 11(58), 2117–2122 (2023). URL: https://www.revistaferidas.com.br/index.php/revistaferidas/article/view/3046
39. R. La Rosa, H.K. Johansen & S. Molin. Convergent metabolic specialization through distinct evolutionary paths in Pseudomonas aeruginosa. mBio, 9(2), e00269-18 (2018). Doi: https://doi.org/10.1128/mBio.00269-18
40. D.I. Massé. Psychrophilic anaerobic digestion of swine manure slurry in intermittently fed sequencing batch reactor. Ph.D. thesis. University of Ottawa, Ottawa (ON), 1995; 298 p. URL: https://ruor.uottawa.ca/items/565264b2-c0e2-4d26-b113-32a64bcb74aa
41. J.F. Nie, K. Oh-ishi, X. Gao & K. Hono. Solute segregation and precipitation in a creep-resistant Mg–Gd–Zn alloy. Acta Materialia, 56(20), 6061–6076 (2008). Doi: https://doi.org/10.1016/j.actamat.2008.08.025
42. A.L. Tonetti, B. Coraucci-Filho & R. Stefanutti. Pós-tratamento de efluente de filtros anaeróbios operados com baixo tempo de detenção hidráulica por escoamento superficial no solo. Engenharia Sanitaria e Ambiental, 17(1), 7–12 (2012). Doi: https://doi.org/10.1590/S1413-41522012000100004
43. A.C.d. Nascimento, V.T. Reichardt, J.F.d.M. Vasco & L.S. Rodrigues. Testes fenotípicos para a detecção e diferenciação de carbapenemases em enterobacterales isoladas de hemoculturas de pacientes oncológicos. Cadernos da Escola de Saúde, 19(1), 40–49 (2019). URL: https://portaldeperiodicos.unibrasil.com.br/index.php/cadernossaude/article/view/5299
44. R.A.d. Santos. Produção de prodigiosina por Serratia marcecens UCP 1549 sob fermentação em estado sólido e avaliação do seu potencial antimicrobiano. Dissertação para obtenção do título de mestre. Univesidade Católica de Pernambuco, Recife, 2020; 108 p. URL: http://tede2.unicap.br:8080/bitstream/tede/1254/5/Ok_renata_andreia_santos.pdf
45. G.C. Fernandes, P.A.L. Rosa, A. Jalal, C.E.d.S. Oliveira, F.S. Galindo, R.D.S. Viana, et al. Technological quality of sugarcane inoculated with plant-growth-promoting bacteria and residual effect of phosphorus rates. Plants, 12(14), 2699 (2023). Doi. https://doi.org/10.3390/plants12142699
46. K. Kiga, X.E. Tan, R. Ibarra-Chávez, S. Watanabe, Y. Aiba, Y. Sato’o, et al. Development of CRISPRCas13a-based antimicrobials capable of sequence-specific killing of target bacteria. Nat. Commun., 11(1), 2934 (2020). Doi: https://doi.org/10.1038/s41467-020-16731-6
47. R. Nakamura-Silva, R. Coelho de Soussa, R.Y. Fujimoto & A. Pitondo-Silva. Sewage from a secondary hospital in Ribeirão Preto, southeastern Brazil: A source of multidrug-resistant Enterobacteriaceae. Environ. Monit. Assess., 195(1), 204 (2022). Doi: https://doi.org/10.1007/s10661-022-10830-1
48. R. Zhang, L. Liu, H. Zhou, E.W. Chan, J. Li, Y. Fang, et al. Nationwide surveillance of clinical carbapenem-resistant Enterobacteriaceae (CRE) strains in China. eBioMedicine. 19, 98–106 (2016). Doi: https://doi.org/10.1016/j.ebiom.2017.04.032
49. J.P.R. Furlan, M.S. Ramos, R.d.S. Rosa, E.A. Savazzi & E.G. Stehling. Occurrence and genetic characteristics of multidrug-resistant Escherichia coli isolates co-harboring antimicrobial resistance genes and metal tolerance genes in aquatic ecosystems. Int. J. Hyg. Environ. Health, 244, 114003 (2022). Doi: https://doi.org/10.1016/j.ijheh.2022.114003
50. E. Korzeniewska & M. Harnisz. Beta-lactamase-producing Enterobacteriaceae in hospital effluents. J. Environ. Manage., 123, 1–7 (2013). Doi: https://doi.org/10.1016/j.jenvman.2013.03.024
51. M. Hutinel, P.M.C. Huijbers, J. Fick, C. Åhrén, D.G.J. Larsson, C.F. Flach. Population-level surveillance of antibiotic resistance in Escherichia coli through sewage analysis. Euro Surveill., 24(37), 1800497 (2019). Doi: https://doi.org/10.2807/1560-7917.ES.2019.24.37.1800497
52. E.M. Anastasi, B. Matthews, H.M. Stratton & M. Katouli. Pathogenic Escherichia coli found in sewage treatment plants and environmental waters. Appl. Environ. Microbiol., 78(16), 5536–5541 (2012). Doi: https://doi.org/10.1128/AEM.00657-12
53. V.F.S. Nascimento & M.F.F. Araújo. Ocorrência de bacterias patogénicas oportunistas em um reservatorio do semiárido do Rio Grande do Norte, Brasil. Revista de Ciencias Ambientais, 7(1), 92–104 (2013). URL: https://www.passeidireto.com/arquivo/148957752/ocorrencia-de-bacterias-patogenicas-oportunistas-em-um-reservatorio-do-semiarido
54. A.C.B. Resende. Detecção de microrganismos presentes no efluente hospitalar e na estação de tratamento de esgoto de Goiânia: presença de bactérias gram-negativas resistentes aos antimicrobianos. Dissertação para obtenção do título de Mestre em Ciências Ambientais e Saúde. Universidade Católica de Goiás, Goiânia, Goiás, 2009; 134 p. URL: http://tede2.pucgoias.edu.br:8080/handle/tede/3095
55. B. Hooban, K. Fitzhenry, L. O’Connor, G. Miliotis, A. Joyce, A. Chueiri, et al. A longitudinal survey of antibiotic-resistant Enterobacterales in the Irish environment, 2019-2020. Sci. Total Environ., 828, 154488 (2022). Doi: https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2022.154488
56. D.C. Simião, F. Pereira de Andrade, W.G. Lima, M. Larissa de Jesus, P.H. Gomes-Dorim & M.C. Paiva. Determination of mercury concentration by a new spectrophotometric method and evaluation of bacterial diversity in river water samples from Brazil. Water Supply, 22(5), 5535–5548 (2022). Doi : https://doi.org/10.2166/ws.2022.173
57. D. Girlich, L. Poirel & P. Nordmann. PER-6, an extended-spectrum β-lactamase from Aeromonas allosaccharophila. Antimicrob. Agents Chemother., 54(4), 1619–1622 (2010). Doi: https://doi.org/10.1128/aac.01585-09
58. L.S. Munoz-Price, L. Poirel, R.A. Bonomo, M.J. Schwaber, G.L. Daikos, M. Cormican, et al. Clinical epidemiology of the global expansion of Klebsiella pneumoniae carbapenemases. Lancet Infect. Dis., 13(9), 785–796 (2013). Doi: https://doi.org/10.1016/S1473-3099(13)70190-7
59. J.L.M. Sampaio & A.C. Gales. Antimicrobial resistance in Enterobacteriaceae in Brazil: focus on βlactams and polymyxins. Braz. J. Microbiol., 47(Suppl. 1), 31–37 (2016). DOI: https://doi.org/10.1016/j.bjm.2016.10.002
60. C.P. Tavares. Caracterização molecular de Enterobacteriaceae não-Klebsiella pneumoniae produtoras de KPC isoladas em diferentes estados brasileiros. Dissertação apresentada como parte dos requisitos para obtenção do título de Mestre em Biologia Celular e Molecular. Instituto Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 2014; 148 p. URL: https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/9309?locale=pt_BR
61. T. Zhang, M.-F. Shao & L. Ye. 454 Pyrosequencing reveals bacterial diversity of activated sludge from 14 sewage treatment plants. ISME J., 6(6), 1137–1147 (2012). Doi: https://doi.org/10.1038/ismej.2011.188
62. M.T. Suldofski. Caracterização fenotípica e identificação molecular de bactérias multirresistentes em efluente não tratado de um hospital no Brasil. Tese para obtenção do título de Doutor. Universidade Estadual do Oeste do Paraná – UNIOESTE, Cascavel PR, 2021; 87 p. URL: https://tede.unioeste.br/bitstream/tede/5918/5/Monica_Suldofski2021.pdf
63. J. Findlay, L. Poirel, J. Kessler, A. Kronenberg & P. Nordmann. New Delhi metallo-β-lactamase–producing enterobacterales bacteria, Switzerland, 2019–2020. Emerg. Infect. Dis., 27(10), 2628–2637 (2021). Doi: https://doi.org/10.3201/eid2710.211265
64. S. Bagali, L. Kakhandaki, R. Karigoudar, S.V. Gajul, P.G. Mantur & P.R. Shahapur. Detection of metallo beta-lactamases among Enterobacteriaceae isolates at a tertiary care hospital, south India. South East Asia J. Med. Sci., 4(3), 1–5 (2020). Doi: https://doi.org/10.5281/zenodo.4019977
65. F. Dallanora, L.M.F. Dallanora, A.F. Dallanora, G. Bohneberger, F.M. D’Agostini, D. Carvalho & A.P. Remor. Multirresistant Pseudomonas aeruginosa from hospital end household effluent of public collecting network. Revista Interdisciplinar de Estudos em Saúde, 1(1), 46–55 (2023). Doi: https://doi.org/10.33362/ries.v1i1.3117
66. N.M.C. Branco, M.U. Pereira, R.G. Ferreira, B.F. Spisso, A.L.M. Albert & C.M.C.P.A. Romão. Ocorrência de antimicrobianos em águas superficiais e residuais do Município do Rio de Janeiro: uma questão de vulnerabilidade ambiental e de saúde pública. Research, Society and Development, 10(10), e415101019000 (2021). Doi: http://doi.org/10.33448/rsd-v10i10.19000
67. I.D. Rafraf, I. Lekunberri, A. Sànchez-Melsió, M. Aouni, C.M. Borrego & J.L. Balcázar. Abundance of antibiotic resistance genes in five municipal wastewater treatment plants in the Monastir Governorate, Tunisia. Environ. Pollut., 219, 353–358 (2016). Doi: https://doi.org/10.1016/j.envpol.2016.10.062
68. S.G. Pereira de Souza, I. Carvalho Dos Santos, M.A. Dorigan-Bondezan, L.F. Melhado-Corsatto, I.C. da Silva-Caetano, M. Marchi-Zaniolo, R. da Matta, L.S. Merlini, L. Nunes-Barbosa & D. DibGonçalves. Bacteria with a potential for multidrug resistance in hospital material. Microb. Drug Resist., 27(6), 835–842 (2021). Doi: https://doi.org/10.1089/mdr.2019.0305
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