Publicado
Main laboratory methods used for the isolation and identification of Staphylococcus spp.
Principales métodos de laboratorio utilizados para el aislamiento e identificación de Staphylococcus spp.
Principais métodos laboratorais utilizados para o isolamento e identificação de Staphylococcus spp.
DOI:
https://doi.org/10.15446/rcciquifa.v50n1.95444Palabras clave:
Microbiology, Staphylococcus, clinical laboratory techniques (en)Microbiologia, Staphylococcus, técnicas de laboratório clínico (pt)
Microbiología, Staphylococcus, técnicas de laboratorio clínico (es)
Descargas
Introduction: Laboratory diagnosis related to clinical microbiology is highly complex, due to subjectivity when interpreting the results. Among bacterial pathogens, those linked to the Staphylococcus genus are relevant from a clinical and epidemiological point of view. Aim: To review the literature relative to the main laboratory methods used for the isolation and identification of microorganisms of the genus Staphylococcus. Methodology: The study was based on a literature search between 2000 and 2020, in the BVS, PubMed, Scielo, ScienceDirect and CAPES Periodical databases. Regarding its laboratory diagnosis, microscopy is used by the Gram method to verify the bacterium’s morphology; novobiocin test, aiming to trace coagulase negative strains; use of biochemical tests, such as coagulase and catalase tests; identification through the use of selective and nonspecific culture media, such as blood agar (in which the hemolytic patterns of pathogens are observed), salty mannitol agar (specific to the species of Staphylococcus aureus) and DNAse agar (selective to S. aureus strains , S. intermedius and S. hyicus). Results: The Staphylococcus genus is of great clinical importance in the field of public health. Thus, the quality and speed of diagnosis are essential to promote measures to combat these pathogens, contributing to the well-being and survival of those affected.
Introducción: el diagnóstico de laboratorio relacionado con la microbiología clínica es muy complejo, debido a la subjetividad al interpretar los resultados. Entre los patógenos bacterianos, los relacionados con el género Staphylococcus son relevantes desde un punto de vista clínico y epidemiológico. Objetivo: revisar la literatura relacionada con los principales métodos de laboratorio utilizados para el aislamiento e identificación de microorganismos del género Staphylococcus. Metolodogía: el estudio se basó en una búsqueda bibliográfica entre 2000 y 2020, en las bases de datos BVS, PubMed, Scielo, ScienceDirect y Periódicos CAPES. En cuanto a su diagnóstico de laboratorio, se utilizan la microscopía y el método de Gram para verificar la morfología de la bacteria; prueba de novobiocina, con el objetivo de rastrear cepas negativas de coagulasa; uso de pruebas bioquímicas, como las pruebas de coagulasa y catalasa; identificación mediante el uso de medios de cultivo selectivos e inespecíficos, como agar sangre (en el que se observan los patrones hemolíticos de los patógenos), agar manitol salado (específico para la especie de Staphylococcus aureus) y agar ADNse (selectivo para cepas de Staphylococcus aureus), Staphylococcus intermedius y Staphylococcus hyicus). Resultados: el género Staphylococcus es de gran importancia clínica en el campo de la salud pública. Por lo tanto, la calidad y la velocidad del diagnóstico son esenciales para promover medidas para combatir estos patógenos, contribuyendo al bienestar y la supervivencia de los afectados.
Introdução: o diagnóstico laboratorial relacionado à microbiologia clínica é de elevada complexidade, em virtude da subjetividade perante na interpretação dos resultados. Dentre os patógenos bacterianos, os vinculados ao gênero Staphylococcus são relevantes desde o ponto de vista clínico e epidemiológico. Objetivo: fazer uma revisão narrativa sobre os principais métodos laboratoriais utilizados para o isolamento e identificação de microrganismos do gênero Staphylococcus. Metodologia: o estudo baseou-se em uma pesquisa na literatura entre o período de 2000 a 2020, nas bases de dados BVS, PubMed, Scielo, ScienceDirect e Periódico CAPES. Quanto ao seu diagnóstico laboratorial utiliza-se a microscopia, através do método de Gram, para verificação da morfologia da bactéria; teste da novobiocina, objetivando o rastrearmento de cepas coagulase negativa; uso de provas bioquímicas, como os testes de coagulase e catalase; identificação por meio da utilização de meios de cultura seletivos e inespecíficos, como o agar sangue (em que se observa os padrões hemolíticos dos patógenos), agar manitol salgado (específico a espécie de Staphylococcus aureus) e agar ADNse (seletivo as estirpes de Staphylococcus aureus, Staphylococcus intermedius e Staphylococcus hyicus). Resultados: o gênero Staphylococcus é de grande importância clínica no âmbito da saúde pública. Assim, a qualidade e rapidez do diagnóstico são imprescindíveis para promover medidas de combate a esses patógenos, contribuindo para o bem-estar e sobrevida dos acometidos.
Referencias
J. M. Miller, M.J. Binnicker, S. Campbell, K.C. Carroll, K.C. Chapin, P.H. Gilligan, et al., A guide to utilization of the microbiology laboratory for diagnosis of infectious diseases: 2018 update by the Infectious Diseases Society of America and the American Society for Microbiology, Clin. Infect. Dis., 67(6), e1-e94 (2018).
R.E.P. Pereira, G.G Petrechen, Principais métodos diagnósticos bacterianos, revisão de literatura, Rev. Cient. Eletrônica Med. Vet., 16, 12 (2011).
J.-C. Lagier, S. Edouard, I. Pagnier, O. Mediannikov, M. Drancourt, D. Raoult, Current and past strategies for bacterial culture in clinical microbiology, Clin. Microbiol. Rev., 28(1), 208-236 (2015).
G.P. Alencar, J. Sabino, J.L. Gonçalves, M.R. Chang, Bacterial, fungal and viral infections in surgical site: clinical, diagnostic and epidemiological aspects, J. Health Sci., 21(3), 219-224 (2019).
A.L. Santos, D.O. Santos, C.C. Freitas, B.L.A. Ferreira, I.F. Afonso, C.R. Rodrigues, et al., Staphylococcus aureus: visitando uma cepa de importância hospitalar, J. Bras. Patol. Med. Lab., 43, 413-423 (2007).
F.P. Andrade Júnior, B.T.M. Lima, T.W.B. Alves, M.E.S. Menezes, Fatores que propiciam o desenvolvimento de Staphylococcus aureus em alimentos e riscos atrelados a contaminação: uma breve revisão, Rev. Ciênc. Méd. Biol., 18(1), 89-93 (2019).
L. Cordeiro, P. Figueiredo, H. Souza, A. Sousa, F. Andrade-Júnior, D. Medeiros, et al., Terpinen-4-ol as an antibacterial and antibiofilm agent against Staphylococcus aureus, Int. J. Mol. Sci., 21, (2020).
R.R.P. Prado, E.A. Freitas, E.C. Valadares Júnior, P.C. Costa, M.C. Siqueira,D.A. Rossi, Staphylococcus spp.: importantes riscos à saúde pública, Pubvet, 9(8), 348-399 (2015).
L.L.S. Rosa, L.F.M. Galvão, H. Diniz Neto, J.R. Nóbrega, D.F. Silva, F.P. Andrade Júnior, et al., Isoeugenol efficacy against Staphylococcus aureus, Int. J. Dev. Res., 9(10), 30877-30879 (2019).
L. Cordeiro, P. Figueiredo, H. Souza, A. Sousa, F. Andrade-Júnior, J. Barbosa- Filho, et al., Antibacterial and antibiofilm activity of myrtenol against Staphylococcus aureus, Pharmaceuticals, 13, 133 (2020).
M.H.P. Lira, F. P. Andrade Júnior, G.F.Q. Moraes, G.S. Macena, F.O. Pereira, I.O. Lima, Antimicrobial activity of geraniol: an integrative review, J. Essent. Oil Res., 32, 187-197 (2020).
S.Y.C. Tong, J.S. Davis, E. Eichenberger, T.L. Holland, V.G. Fowler Jr, Staphylococcus aureus infections: epidemiology, pathophysiology, clinical manifestations, and management, Clin. Microbiol. Rev., 28(3), 603-661 (2015).
S.L.O. Toledo, R.M.S. Silva, I.C.R. Santos, W.G. Lima, L.G.R. Ferreira, M.C. Paiva, Domestic wastewater treatment plants as sources of macrolide-lincosamide-streptogramin B- and penicillin-resistant Staphylococcus aureus in Brazil, Rev. Colomb. Cienc. Quim. Farm., 49(2), 267-279 (2020).
Hospitais Universitários Federais, “POP/CCIH/007/2016 revisado em 2019: Procedimento de coleta de material para cultura”, João Pessoa, 2019, URL: http://www2.ebserh.gov.br/documents/220250/4375831/POP+DE+COLETA+DE+MATERIAL+PARA+CULTURA.pdf/8a2623ee-d48a-4aa5-8c7e-adc80ee405ea
S. Pratavieira, Montagem e caracterização de um microscópio óptico não linear para imagens de tecidos biológicos, Tese, Universidade de São Paulo, 2014, pp. 1-108.
A.K. Beyer, G.C.C. Currea, A. Holm, Validity of microscopy for diagnosing urinary tract infection in general practice. A systematic review, Scand. J. Prim. Health Care, 37(3), 373-379 (2019).
P. Silva, A.M.M. Carneiro, M.C. Carloni, M.I.C. Medeiros, J.O. Silva, S.H.C. Reche, et al., Isolamento, caracterização e resistência a antimicrobianos de bactérias Gram-negativas aeróbias e anaeróbias facultativas de amostras de solo, Rev. Inst. Adolf Lutz, 64(2), 245-251 (2005).
V. R. Freitas, S.U. Picoli, A coloração de Gram e as variações na sua execução, NewsLab, 87, 124-128 (2007).
Brasil, Ministério da Saúde, Secretaria de Políticas de Saúde, “Técnica de Coloração de GRAM”, Ministério de Saúde, Brasília, 2001.
G.S. Santos, E.P. Marques, H.A.S. Silva, C.W.B. Bezerra, A.B. Marques, Identificação e quantificação do cristal violeta em aguardentes de mandioca (Tiquira), Quim. Nova, 28(4), 583-586 (2005).
M. Mori, R.J. Cassella, Estudo da sorção do corante catiônico violeta cristal por espuma de poliuretano em meio aquoso contendo dodecilsulfato de sódio, Quim. Nova, 32(8), 2039-2045 (2009).
W.G. Santos, R.S. Scurachio, D.R. Cardoso, Photochemical behavior of Safranine- Riboflavin complex in the degradation of folic acid, J. Photochem. Photobiol. A, 293, 32-39 (2014).
J.L.B. Moreira, C.B.M. Carvalho, C.C. Frota, “Visualizações bacterianas e colorações”, Imprensa Universitária, Fortaleza, 2015.
J. Mehraj, W. Witte, M.K. Akmatov, F. Layer, G. Werner, G. Krause, Epidemiology of Staphylococcus aureus nasal carriage patterns in the community, Curr. Top. Microbiol., 387, 55-87 (2016).
Y. Wu, S. Jiang, Z. Fu, Employment of teicoplanin-coated magnetic particles for quantifying grampositive bacteria via catalase-catalyzed hydrolysis reaction of H2O2, Talanta, 211, 120728 (2020).
E.P. Silva, M.A. Carreiro, R.C. Gomes, Metodologia para a identificação de Staphylococcus sp. na superfície do colchão da maca no pronto socorro, Rev. Pró-univerSUS, 7(3), 15-19 (2016).
J. Lagos, P. Alarcón, D. Benadof, S. Ulloa, R. Fasce, J. Tognarelli, Novel nonsense mutation in the katA gene of a catalase-negative Staphylococcus aureus strain, Braz. J. Microbiol., 47(1), 177-180 (2016).
M.M. Eason, X.X. Fan, The role and regulation of catalase in respiratory tract opportunistic bacterial pathogens, Microb. Pathog.,74, 50-58 (2014).
H.N. Abdelhamid, H.-F. Wu, Selective biosensing of Staphylococcus aureus using chitosan quantum dots, Spectrochim. Acta A, 188, 50-56 (2018).
M. Peetermans, P. Verhamme, T. Vanassche, Coagulase Activity by Staphylococcus aureus: A Potential Target for Therapy?, Semin. Thromb. Hemost., 41(4), 433-444 (2015).
G.M. Costa, U.P. Pereira, D.A.C. Custódio, N. Silva, Caracterização de Staphylococcus coagulase-positiva utilizando plasmas de diferentes espécies animais, Rev. Inst. Adolfo Lutz, 70(4), 584-588 (2011).
V.N.P. Peres, R.R.B. Moreira, J. Notário, G. Zanusso Júnior, Isolamento e identificação de Staphylococcus aureus em fossas nasais e mãos de profissionais da saúde no Hospital Santa Lúcia em Maringá-PR, Rev. Uningá, 30(1), 1-11 (2011).
S. Thirunavukkarasu, K.C. Rathish, Evaluation of Direct Tube Coagulase Test in Diagnosing Staphylococcal Bacteremia, J. Clin. Diagn. Res., 8(5), 19-21 (2014).
T.C.N. Martinez, S.S. Laborda, A.V.M. Anunciação, M.G.A.A. Almeida, C.C.M. Rocha, D.P.M. Pinheiro, et al., Caracterizão de Staphylococcus sp. isolados de processos infecciosos de caninos utilizando plasmas de diferentes espécies animais, Rev. Bras. Saúde Prod. Anim., 1(2), 48-53 (2001).
S. Sah, P. Bordoloi, D. Vijaya, S.K. Amarnath, C. Sheela Devi, V. A. Indumathi, et al., Simple and economical method for identification and speciation of Staphylococcus epidermidis and other coagulase negative Staphylococci and its validation by molecular methods, J. Microbiol. Methods, 149, 106-119 (2018).
J.A. Lindsay, Staphylococci: Evolving Genomes, Microbiol. Spectr., 7(6), GPP3-0071-2019. (2019).
A.H. Nurfarahin, M.S. Mohamed, L.Y. Phang, Culture medium development for microbial-derived surfactants production-an overview, Molecules, 23(5), 1049 (2018).
M. Drancourt, D. Raoult, Cost-effectiveness of blood agar for isolation of mycobacteria, PLoS Neglect. Trop. D., 1(2), e83 (2007).
E. Yeh, B.A. Pinsky, N. Banaei, E.J. Baron, Hair sheep blood, citrated or defibrinated, fulfills all requirements of blood agar for diagnostic microbiology laboratory tests, PLoS One, 4(7), e6141 (2009).
A.L. Santos, D.O. Santos, C.C. Freitas, B.L.A. Ferreira, I.F. Afonso, C.R. Rodrigues, et al., Staphylococcus aureus: visitando uma cepa de importância hospitalar, J. Bras. Patol. Med. Lab., 43(6), 413-423 (2007).
T.V.M.D. Simões, A.A. Oliveira, K.M. Teixeira, A.S. Rodrigues Júnior, I.M. Freitas, “Identificação laboratorial de Staphylococcus aureus em leite bovino”, Embrapa Tabuleiros Costeiros, Aracaju, 2013.
D.C.M. Santos, T.M. Costa, R.F. Rabello, F.A. Alves, S.S.B. Mondino, Mannitol -negative methicillin-resistant Staphylococcus aureus from nasal swab specimens in Brazil, Braz. J. Microbiol., 46(2), 531-533 (2015).
F.A. Ayeni, C. Andersen, N. Norskov-Lauritsen, Comparison of growth on mannitol salt agar, matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry, VITEK® 2 with partial sequencing of 16S rRNA gene for identification of coagulase-negative staphylococci, Microb. Pathog., 105, 255-259 (2017).
M.E. Saab, C.A. Muckle, H. Stryhn, J.T. Mcclure, Comparison of culture methodology for the detection of methicillin-resistant Staphylococcus pseudinterme dius in clinical specimens collected from dogs, J. Vet. Diagn. Invest., 30(1), 93-98 (2018).
D.F.J. Brown, D.I. Edwards, P.M. Hawkey, D. Morrison, G.L. Ridgway, K.J., et al., Towner, Guidelines for the laboratory diagnosis and susceptibility testing of methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA), J. Antimicrob. Chemother., 56, 1000-1018 (2005).
N.L.P. Iorio, R.B.R. Ferreira, R.P. Schuenck, K.L. Malvar, A.P. Brilhante, A.P.F. Nunes, et al., Simplified and reliable scheme for species-level identification of Staphylococcus clinical isolates, J. Clin. Microbiol., 45(8), 2564-2569 (2007).
D.P. Kateete, C.N. Kimani, F.A. Katabazi, A. Okeng, M.S. Okee, A. Nanteza, Identification of Staphylococcus aureus: DNase and Mannitol salt agar improve the efficiency of the tube coagulase test, Ann. Clin. Microb. Antimicrob., 9, 23 (2010).
D.G. Araújo, M.E.F. Oliveira, S.R. Oliveira, Staphylococcus lugdunensis em hemoculturas: perfil de susceptibilidade aos antimicrobianos, Rev. Bras. Anal. Clin., 49(4), 376-380 (2017).
Brasil, Agência de Vigilância em Saúde, Microbiologia clínica para o controle de infecção relacionada à assistência à saúde, “Módulo 6: Detecção e identificação de bactérias de importância médica”, ANVISA, Brasília, 2013.
K.S. Fulham, S.L. Lemarie, G. Hosgood, H.L.N. Dick, In vitro susceptibility testing of meticillin-resistant and meticillin-susceptible staphylococci to mupirocin and novobiocin, Vet. Dermatol., 22, 88-94 (2010).
A. Tambo-Ong, S. Chopra, B.T. Glaser, K. Matsuyama, T. Tran, P.B. Madrid, Mannich reaction derivatives of novobiocin with modulated physiochemical properties and their antibacterial activities. Bioorg. Med. Chem. Lett., 21(19), 5697-5700 (2011).
Brasil, Agência de Vigilância em Saúde, “Módulo 5: Detecção e identificação de bactérias de importância médica”, ANVISA, Brasília, 2004.
A.M. Ferreira, M.F. Bonesso, A.L. Mondelli, M.L.R.S. Cunha, Identification of Staphylococcus saprophyticus isolated from patientswith urinary tract infection using a simple set of biochemical testscorrelating with 16S-23S interspace region molecular weight patterns, J. Microbiol. Methods, 91, 406-411 (2012).
E.A. Ostrosky, M.K. Mizumoto, M.E.L. Lima, T.M. Kaneko, S.O. Nishikawa, B.R. Freitas, Métodos para avaliação da atividade antimicrobiana e determinação da Concentração Mínima Inibitória (CMI) de plantas medicinais, Rev. Bras. Farmacogn., 18(2), 301-307 (2008).
Clinical and Laboratory Standards Institute, “Methods for dilution antimicrobial susceptibility tests for bacteria that grow aerobically; approved standard”, ninth edition, CLSI, Wayne, 2012.
M.H.P. Lira, G.F.Q. Moraes, G.M. Santos, F.P. Andrade Júnior, F.O. Pereira, I.O. Lima, Synergistic antifungal activity of monoterpenes in combination with conventional antimicrobials against Gram-positive and Gram-negative bactéria, Rev. Ciênc. Med. Biol., 19(2), 258-264 (2020).
G.N. McAuliffe, M. Smith, G. Cooper, R.F. Forster, S.A. Roberts, Variability in azithromycin susceptibility results for Neisseria gonorrhoeae Obtained using gradient MIC strip and agar dilution techniques, J. Clin. Microbial., 57(12), e01353-19 (2019).
J. Zurita, C. Mejía, M. Guzmán-Blanco, Diagnóstico e teste de sensibilidade para Staphylococcus aureus resistente à meticilina na América Latina, Braz. J. Infect. Dis., 14, S97-S107 (2010).
E.H. Campana, C.G. Carvalhaes, P.P. Barbosa, A.M.O. Machado, A.M. Paula, A.C. Gales, Avaliação das metodologias M.I.C.E.®, Etest® e microdiluição em caldo para determinação da CIM em isolados clínicos, J. Bras. Patol. Med. Lab., 47(2), 157-164 (2011).
S. Jean, S. Garrett, C. Anglade, L. Bridon, L. Davies, O.B. Garner, J. Richards, M. Wallace, M. Wootton, C.-A.D. Burnham, Multicenter clinical evaluation of etest meropenem-vaborbactam (bioMérieux) for susceptibility testing of Enterobacterales (Enterobacteriaceae) and Pseudomonas aeruginosa, J. Clin. Microbiol., 58(1), e01205-19 (2020).
L.M. Sejas, S. Silbert, A.O. Reis, H.S. Sader, Avaliação da qualidade dos discos com antimicrobianos para testes de disco-difusão disponíveis comercialmente no Brasil, J. Bras. Patol. Med. Lab., 39(1), 27-35 (2003).
L.C. Gelatti, R.R. Bonamigo, A.P. Becker, P.A. d’Azevedo, Staphylococcus aureus resistentes à meticilina: disseminação emergente na comunidade, An. Bras. Dermatol, 84(5), 501-506 (2009).
A.S. Lee, H. Lencastre, J. Garau, J. Kluytmans, S. Malhotra-Kumar, A. Peschel, S. Harbarth, Methicillin-resistant Staphylococcus aureus, Nat. Rev. Dis. Primers, 4, 18033 (2018).
T.S.C. Atique, T.A.M. Lima, V.A. Souza, P.F.C. Pacheco, A.A.C. Furini, Sensibilidade à meticilina/oxacilina de Staphylococcus aureus isolados da mucosa nasal de alunos do Centro Universitário de Rio Preto, Rev. Bras. Farm., 93(3), 347- 352 (2012).
S. Lakhundia, K. Zhang, Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus: Molecular Characterization, Evolution, and Epidemiology, Clin. Microbiol. Rev., 31(4), (2018).
V.A.A. Lanes, A.L. Bender, M.B. Delwing, Ajuste de dose no uso de vancomicina na uti pediátrica de um hospital universitário de Porto Alegre, Rev. Bras. Farm. Hosp. Serv. Saúde, 7(3), 25-29 (2016).
V.Y. Obara, C.P. Zacas, C.M.D.M. Carrilho, V.D.A. Delfino, Esquema posológico atualmente utilizado para vancomicina falha em obter níveis terapêuticos em 40% dos pacientes internados em unidade de terapia intensiva, Rev. Bras. Ter. Intensiva, 28(4), 380-386 (2016).
M.J. Mimica, E.N. Berezin, Staphylococcus aureus resistente à vancomicina: um problema emergente, Arq Med Hosp Fac Cienc Med Santa Casa São Paulo, 5(12), 52-56 (2006).
A. Breves, C.A.C. Miranda, C. Flores, I. Filippis, M.M. Clementino, Methicillin- and vancomycin-resistant Staphylococcus aureus in health care workers and medical devices, J. Bras. Patol. Med. Lab., 51(3), 143-152 (2015).
M.R.E. Perugini, V.H. Perugini, A.R.M. Ferreira, C.F. Oliveira, G.T. Gomes, B.A.R. Lima, A.P.D. Pereira, F.E.C. Marroni, E.C. Vespero, M. Pelisson, M.A.G. Ribeiro, Tendência de resistência entre isolados clínicos de Staphylococcus aureus em um hospital universitário do norte do Paraná de 2002 a 2011, Semina: Ciên. Biol. Saúde, 36(1), 275-282 (2015).
Cómo citar
APA
ACM
ACS
ABNT
Chicago
Harvard
IEEE
MLA
Turabian
Vancouver
Descargar cita
CrossRef Cited-by
1. Olumuyiwa Adeyemo, Olufemi Okunye, Francisca Nwaokorie, Omri Kamet. (2023). Isolation and Characterization of Coagulase Positive, Methicillin and Multi-Drug Resistant Staphylococcus and Mammaliicoccus species Isolated from Wound of Patients Attending Federal Medical Centre, Yola, Adamawa State, Nigeria. Iranian Journal of Medical Microbiology, 17(4), p.414. https://doi.org/10.30699/ijmm.17.4.414.
2. Thabani Sydney Manyatsi, Yu-Hsin Lin, Ying-Tzy Jou. (2024). The isolation and identification of Bacillus velezensis ZN-S10 from vanilla (V. planifolia), and the microbial distribution after the curing process. Scientific Reports, 14(1) https://doi.org/10.1038/s41598-024-66753-z.
3. M. Shevchenko, T. Tsarenko. (2023). Microbiological and molecular genetic characterization of Staphylococcus aureus and Staphylococcus pseudintermedius. Naukovij vìsnik veterinarnoï medicini, (2 (184)), p.135. https://doi.org/10.33245/2310-4902-2023-184-2-135-144.
4. Yared Abate Getahun, Solomon Lulie Abey, Achenef Melaku Beyene, Mequanint Addisu Belete, Tesfaye Sisay Tessema. (2024). Coagulase-negative staphylococci from bovine milk: Antibiogram profiles and virulent gene detection. BMC Microbiology, 24(1) https://doi.org/10.1186/s12866-024-03415-0.
5. Tanawan Soimala, Siriwat Wasiksiri, Kanpapat Boonchuay, Tuempong Wongtawan, Punpichaya Fungwithaya. (2024). Methicillin-resistant coagulase-positive staphylococci in new, middle-aged, and old veterinary hospitals in southern Thailand: A preliminary study. Veterinary World, , p.282. https://doi.org/10.14202/vetworld.2024.282-288.
6. Rocio Angélica Ruiz-Romero, Einar Vargas-Bello-Pérez. (2023). Non-aureus staphylococci and mammaliicocci as a cause of mastitis in domestic ruminants: current knowledge, advances, biomedical applications, and future perspectives – a systematic review. Veterinary Research Communications, 47(3), p.1067. https://doi.org/10.1007/s11259-023-10090-5.
Dimensions
PlumX
Visitas a la página del resumen del artículo
Descargas
Licencia
Derechos de autor 2021 Revista Colombiana de Ciencias Químico-Farmacéuticas
![Creative Commons License](http://i.creativecommons.org/l/by/4.0/88x31.png)
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
El Departamento de Farmacia de la Facultad de Ciencias de la Universidad Nacional de Colombia autoriza la fotocopia de artículos y textos para fines de uso académico o interno de las instituciones citando la fuente. Las ideas emitidas por los autores son responsabilidad expresa de estos y no de la revista.
Todo el contenido de esta revista, excepto dónde está identificado, está bajo una Licencia Creative Commons de Atribución 4.0 aprobada en Colombia. Consulte la normativa en: http://co.creativecommons.org/?page_id=13