Publicado
Anisakis and anisakidosis: Case reports and hosts in South America. Systematic review.
Anisákidos y anisakidosis: Reportes de caso y hospedadores en América del Sur. Revisión sistemática.
DOI:
https://doi.org/10.15446/revfacmed.v69n2.79105Palabras clave:
Anisakis, Anisakiasis, South America, Zoonoses, Communicable Diseases, Emerging (en)Anisakis, Anisakiasis, América del Sur, Zoonosis, Enfermedades Transmisibles Emergentes (es)
Descargas
Introduction: Anisakidosis is a disease caused by the consumption of raw or semi-cooked seafood parasitized by nematode larvae of the Anisakidae family. In Europe and Asia, it is a public health problem; however, in South America it is little known.
Objective: To present anisakidosis case reports and the intermediate hosts of Anisakis reported in South America.
Materials and methods: A systematic review was conducted in Medline, Cochrane, Embase, LILACS and Scopus using a structured search of MeSH and DeCS descriptors. Search strategy: publication period: inception of each database-September 2018; languages: English, Spanish, and Portuguese; study types: case reports and cross-sectional observational studies. The review was complemented with an unstructured search in SciELO and Google Scholar.
Results: The initial search yielded 172 articles. After removing duplicates and reviewing the inclusion criteria, 69 studies were selected for full analysis: 19 case reports and 50 host records. The most reported form of anisakidosis was gastrointestinal anisakidosis with 45 cases; this parasitosis was caused by a single larva in 41 (91.1%). There are several reports of fish for human consumption parasitized by the Anisakis, Contracaecum, Pseudoterranova and Hysterothylacium genera in Argentina (22 fish species), Brazil (34 species), Chile (15 species), Colombia (17 species), Ecuador (8 species), Peru (7 species), Uruguay and Venezuela (2 species each).
Conclusion: Anisakidosis is a latent risk in South America, so it is necessary to establish effective regulations for efficiently controlling the appearance of this parasitic disease in the region. Furthermore, the general population should receive more information about the precautions regarding saltwater fish consumption.
Introducción. La anisakidosis es una parasitosis ocasionada por el consumo de pescado de mar crudo o semicrudo parasitado con larvas de nematodos de la familia Anisakidae. En Europa y Asia es un problema de salud pública; sin embargo, en América del Sur es poco conocida.
Objetivo. Presentar los reportes de caso de anisakidosis y los hospedadores intermediarios de anisákidos reportados en América del Sur.
Materiales y métodos. Se realizó una revisión sistemática en Medline, Cochrane, Embase, LILACS y Scopus mediante la búsqueda estructurada de términos MeSH y DeCS. Estrategia de búsqueda: periodo de publicación: inicio de cada base de datos-septiembre de 2018; idiomas: inglés, español y portugués; tipos de estudio: reportes de caso y estudios transversales observacionales. La revisión fue complementada con una búsqueda no estructurada en SciELO y Google Scholar.
Resultados. La búsqueda inicial arrojó 172 artículos. Una vez removidos los duplicados y revisados los criterios de inclusión, se seleccionaron 69 estudios para análisis completo: 19 reportes de caso y 50 registros de hospedadores. La forma de anisakidosis más reportada fue la gastrointestinal, con 45 casos, donde la parasitosis fue causada por una larva única en 41 (91.1%). Existen varios reportes de peces para consumo humano parasitados por los géneros Anisakis, Contracaecum, Pseudoterranova e Hysterothylacium en Argentina (22 especies de peces), Brasil (34 especies), Chile (15 especies), Colombia (17 especies), Ecuador (8 especies), Perú (7 especies), Uruguay y Venezuela (2 especies cada uno).
Conclusión. La anisakidosis es un riesgo latente para América del Sur, por lo que es necesario instaurar normativas efectivas para el control eficiente de la aparición de esta parasitosis en la región, así como brindar más información a la población general sobre las precauciones necesarias en relación con el consumo de pescado de agua salada.
Referencias
Figueiredo I, Vericimo MA, Cardoso LR, São Clemente SC, do Nascimento ER, Teixeira GA. Cross-sectional study of serum reactivity to Anisakis simplex in healthy adults in Niterói, Brazil. Acta Parasitol. 2013;58(3):399-404. https://doi.org/f5cz.
Hochberg NS, Hamer DH. Anisakidosis: Perils of the deep. Clin Infect Dis. 2010;51(7):806-12. https://doi.org/fj653q.
Jofré L, Neira P, Noemí I, Cerva JL. Pseudoterranovosis y sushi. Rev. Chil. Infectol. 2008;25(3):200-5. https://doi.org/ccnkwv.
Amo-Peláez M, Muñoz-Codoceo C, Martínez-Montiel P, Sánchez-Gómez F, Castellano G, Solís-Herruzo JA. Anisakiasis múltiple. Rev Esp Enfermedades Dig (Madrid). 2008;100(9):581-2.
Cabrera R. Anisakiasis outbreak by Anisakis simplex larvae associated to Peruvian food in Spain. Rev Esp Enfermedades Dig (Madrid). 2010;102(10):610-1.
Picó-Durán G, Pulleiro-Potel L, Abollo E, Pascual S, Muñoz P. Molecular identification of Anisakis and Hysterothylacium larvae in commercial cephalopods from the Spanish Mediterranean coast. Vet Parasitol. 2016;220:47-53. https://doi.org/f8g6gr.
Takahashi S, Ishikura H, Kikuchi K. Anisakidosis: Global Point of View. In: Ishikura H, Aikawa M, Itakura H, Kikuchi K, editors. Host Response to International Parasitic Zoonoses. Springer; 1998. p. 109-120.
Cuéllar C, Daschner A, Valls A, De Frutos C, Fernández-Fígares V, Anadón AM, et al. Ani s 1 and Ani s 7 recombinant allergens are able to differentiate distinct Anisakis simplex-associated allergic clinical disorders. Arch Dermatol Res. 2012;304(4):283-8. https://doi.org/fxpv8t.
Minciullo PL, Cascio A, David A, Pernice LM, Calapai G, Gangemi S. Anaphylaxis caused by helminths: review of the literature. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2012;16(11):1513-8.
Baird FJ, Gasser RB, Jabbar A, Lopata AL. Foodborne anisakiasis and allergy. Mol Cell Probes. 2014;28(4):167-74. https://doi.org/f5596k.
Audícana MT, Ansotegui IJ, Fernández-de Corres L, Kennedy MW. Anisakis simplex: dangerous--dead and alive? Trends Parasitol. 2002;18(1):20-5. https://doi.org/brfz86.
Castellanos JA, Tangua AR, Salazar L. Anisakidae nematodes isolated from the flathead grey mullet fish (Mugil cephalus) of Buenaventura, Colombia. Int J Parasitol Parasites Wildl. 2017;6(3):265-70. https://doi.org/gbw9md.
Cabrera R, Suárez-Ognio L. Probable emergencia de anisakiosis por larvas de Anisakis physeteris durante el fenómeno El Niño 1997-98 en la costa peruana. Parasitol Latinoam. 2002;57(3-4):166-70. https://doi.org/cm4rfs.
Cabrera R, Trillo-Altamirano MP. Anisakidosis: ¿Una zoonosis parasitaria marina desconocida o emergente en el Perú? Rev. Gastroenterol. Perú. 2004;24(4):335-42.
Mercado R, Torres P, Muñoz V, Apt W. Human infection by Pseudoterranova decipiens (Nematoda, Anisakidae) in Chile: report of seven cases. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2001;96(5):653-5. https://doi.org/d3v5wt.
Torres P, Jercic MI, Weitz JC, Dobrew EK, Mercado RA. Human Pseudoterranovosis, an Emerging Infection in Chile. J Parasitol. 2007;93(2):440-3. https://doi.org/bwchzd.
Weitzel T, Sugiyama H, Yamasaki H, Ramirez C, Rosas R, Mercado R. Human infections with Pseudoterranova cattani nematodes, Chile. Emerg Infect Dis. 2015;21(10):1874-5. https://doi.org/f5c3.
Mercado R, Torres P, Gil LC, Goldin L. Anisakiasis en un paciente portadora de una pequeña hernia hiatal. Caso clínico. Rev Med Chil. 2006;134(12):1562-4. https://doi.org/dzgt29.
Menghi CI, Comunale E, Gatta CL. Anisakiosis: primer diagnóstico en Buenos Aires, Argentina. Rev Soc Venez Microbiol. 2011;31(1):71-3.
Mayo-Iñiguez A, Portes-Santos C, Paulo-Vicente AC. Genetic characterization of Anisakis typica and Anisakis physeteris from marine mammals and fish from the Atlantic Ocean off Brazil. Vet Parasitol. 2009;165(3-4):350-6. https://doi.org/dz7n6r.
Timi JT, Paoletti M, Cimmaruta R, Lanfranchi AL, Alarcos AJ, Garbin L, et al. Molecular identification, morphological characterization and new insights into the ecology of larval Pseudoterranova cattani in fishes from the Argentine coast with its differentiation from the Antarctic species, P. decipiens sp. E (Nematoda: Anisakidae). Vet Parasitol. 2014;199(1-2):59-72. https://doi.org/f5phjc.
Wadnipar-Cano LM. Evaluación de la infección parasitaria por nemátodos anisákidos en peces de interés comercial en el municipio de San Marcos (Sucre). Manizales: Facultad de Ciencias Contables, Económicas y Administrativas, Universidad de Manizales; 2013.
Dias Fde JE, Clemente SC de S, Knoff M. Larvae of Anisakidae nematodes and Trypanorhyncha cestodes of public health importance in Aluterus monoceros (Linnaeus, 1758) in Rio de Janeiro State, Brazil. Rev Bras Parasitol Vet. 2010;19(2):94-7.
Cabrera R, Luna-Pineda MA, Suarez-Ognio L. Nuevo caso de infección humana por una larva de Pseudoterranova decipiens (Nematoda, Anisakidae) en el Perú. Rev Gastroenterol. Perú. 2003;23(3):217-20.
Tanteleán M, Huiza A. Larva de nemátodos con importancia médica hallados en peces del mar de Perú y dos primeros casos de infección humana. Rev Peru Med Trop. 1993;7(1):61-5.
Barriga JA, Salazar F, Barriga E. Anisakiasis: presentación de un caso y revisión de la literatura. Rev Gastroenterol Perú. 1999;19(4):317-23.
Rosa-da Cruz A, de Sousa-Souto P, Bucalen-Ferrari CK, Marques-Allegretti S, Arrais-Silva WW. Endoscopic imaging of the first clinical case of anisakidosis in Brazil. Sci Parasitol. 2010;11(2):97-100.
Patiño JA, Olivera MJ. Anisakiasis gastro-alérgica, primera descripción de un caso en Colombia y revisión de literatura. Biomédica. 2019;39(2):1-8. https://doi.org/f5k5.
Puccio F, Cifarelli D, Blanco F, López E, Sarmiento L, Ordaz R, et al. Reactividad alérgica a Anisakis simplex y su asociación con asma bronquial en niños escolares del estado Nueva Esparta, Venezuela. Bol Mal Salud Amb. 2008;48:145-52.
Verhamme MA, Ramboer CH. Anisakiasis caused by herring in vinegar: a little known medical problem. Gut. 1988;29(6):843-7. https://doi.org/cg92n7.
Torres M, Canales M, Concha M, Cofre X, Tellez P. Un caso de anisakiosis en un adulto. Parasitol. día. 2000;24(3-4):1-4. https://doi.org/dnw77b.
Mercado R, Torres P, Maira J. Human case of gastric infection by a fourth larval stage of Pseudoterranova decipiens (Nematoda, Anisakidae). Rev Saude Publica. 1997;31(2):178-81. https://doi.org/ft8h7g.
Figueiredo I, Vericimo M, Terra L, Ferreira T, Sao Clemente SC, Teixeira G. Association between immunoreactivity to Anisakis spp. antigens and high-risk pregnancy. Acta Parasitol. 2015;60(4):609-13. https://doi.org/f7s3bd.
Mancini MA, Biole FG, Salinas VH, Guagliardo SE, Tanzola RD, Morra G. Prevalence, Intensity and ecological aspects of Contracaecum sp. (Nematode:Anisakidae) in freshwater of Argentina. Neotrop Helminthol. 2014;8(1):111-22.
Ulloa-Ulloa LA, Carrasco-Mancero W. Determinación de parásitos en pescados más comercializados en los mercados 10 de noviembre y 24 de mayo (Bellavista), ubicado en el cantón Guaranda, provincia Bolívar [tesis]. Granada, Ecuador: Universidad Estatal de Bolívar; 2008.
Olivero Verbel J, Baldiris Avila R. Parásitos en peces colombianos: Están enfermando nuestros ecosistemas?. Cartagena: Editorial Universidad de Cartagena; 2008.
Hernández-Orts JS, Aznar FJ, Blasco-costa I, García NA, Víllora-montero M, Crespo EA, et al. Description, microhabitat selection and infection patterns of sealworm larvae (Pseudoterranova decipiens species complex, nematoda: Ascaridoidea) in fishes from Patagonia, Argentina. Parasites Vectors. 2013;6(252):1-15. https://doi.org/f5mp.
Castellanos JA, Santana-piñeros AM, Mercado R, Peña S, Pustovrh C, Cruz-Quintana Y. Presence of anisakid larvae in commercial fishes landed in the Pacific coast of Ecuador and Colombia. Infect. 2018;22(4):206-12. https://doi.org/f5mq.
Luque JL, Alves DR. Ecologia das comunidades de metazoários parasitos, do xaréu, Caranx hippos (Linnaeus) e do xerelete, Caranx latus Agassiz (Osteichthyes, Carangidae) do litoral do estado do Rio de Janeiro, Brasil. Rev. Bras. Zool. 2001;18(2):399-410. https://doi.org/d27mm8.
Knoff M, de São Clemente SC, Pinto RM, Gomes DC. Nematodes of elasmobranch fishes from the southern coast of Brazil. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2001;96(1):81-7. https://doi.org/c56q64.
Rodrigues MV. Presença do parasita anisaquideo em pescada (Cynoscion spp.) como ponto critico de controle na cadeia productiva do pescado comercializado na Baixada Santista. Sao Paulo: Instituto Biologico Sao Paulo; 2010.
Timi JT, Sardella NH, Navone GT. Parasitic nematodes of Engraulis anchoita Hubbs et Marini, 1935 (Pisces, Engraulidae) off the Argentine and Uruguayan coasts, South West Atlantic. Acta Parasitologica. 2000;46(3):186-93.
Chavez RA, Valdivia IM, Oliva ME. Local variability in metazoan parasites of the pelagic fish species, Engraulis ringens: Implications for fish stock assessment using parasites as biological tags. J Helminthol. 2007;81(2):113-6. https://doi.org/cj3fzf.
Bracho-Espinoza H, Molina JD, Pirona M, Milagro C. Nematodos de la Familia Anisakidae en productos de la pesca, faja costera Médano Blanco, estado Falcón, Venezuela. Revista Científica FCV-LUZ. 2013;23(2):163-7.
Marigo J, Taniwaki SA, Pinto PL, Soares RM, Catao-Dias JL. Molecular identification of Pseudoterranova azarasi larvae in cod (Gadus sp.) sold for human consumption in Brazil. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 2015;57(6):537-9. https://doi.org/f75zxg.
de Paula Toledo Prado S, Capuano DM. Relato de nematóides da família Anisakidae em bacalhau comercializado em Ribeirão Preto, SP. Rev Soc Bras Med Trop. 2006;39(6):580-1. https://doi.org/bn7xjt.
Torres P, Puga S, Castillo L, Lamilla J, Miranda JC. Helmintos, myxozoos y microsporidios en músculos de peces comercializados frescos y su importancia como riesgo potencial para la salud humana en la ciudad de Valdivia, Chile. Arch Med Vet. 2014;46(1):83-92. https://doi.org/f5mt.
Di Azevedo MIN, Iñiguez AM. Nematode parasites of commercially important fish from the southeast coast of Brazil: Morphological and genetic insight. Int J Food Microbiol. 2018;267:29-41. https://doi.org/gczdfk.
Pardo S, Mejía K, Navarro Y, Atencio V. Prevalencia y abundancia de Contracaecum sp. en rubio (Salminus affinis) en el río Sinú y San Jorge: Descripción morfológica. Rev MVZ Córdoba. 2007;12(1):887-96.
Knoff M, de São Clemente SC, da Fonseca MCG, Felizardo NN, de Lima FC, Pinto RM, et al. Anisakidae nematodes in the blackfin goosefish, Lophius gastrophysus Miranda-Ribeiro, 1915 purchased in the State of Rio de Janeiro, Brazil. Acta Scientiarum. Biological Sciences. 2013;35(1):129-33. https://doi.org/f5mv.
Torres-Frenzel P. Parasitos anisakidos en cebiche de merluza, comercializado en las localidades de Valdivia y Niebla, Chile. Valdivia: Universidad Austral de Chile; 2013.
Torres P, Contreras A, Revenga J, Fritz N. Helmith Parasites in Fishes From Valdivia and Tornagaleones River Estuaries in the South of Chile. Mem Inst Oswaldo Cruz. 1993;88(3):491-2. https://doi.org/bptm4h.
Vicente JJ, Pinto RM, Aguilera O. On Dichelyne (Cucullanellus) elongatus (Tornquist, 1931) Petter, 1974: South American correlated species (Nematoda, Cucullanidae) and some other helminths of Micropogonias furnieri (Desmarest, 1823) (Pisces, Sciaenidae). Mem Inst Oswaldo Cruz. 1989;84(3):357-61. https://doi.org/czrvj6.
Fernández I, Oyarzún C, Valenzuela A, Burgos C, Guaquín V, Campos V. Parásitos del pez luna Mola mola (Pisces: Molidae). Primer registro en aguas de la costa centro sur de Chile. Gayana (Concepción). 2016;80(2):192-7. https://doi.org/f5r8.
Olivero-Verbel J, Baldiris-Avila R, Arroyo-Salgado B. Nematode infection in Mugil incilis (Lisa) from Cartagena Bay and Totumo Marsh, north of Colombia. J Parasitol. 2005;91(5):1109-12. https://doi.org/bd2gwd.
Soares IA, Lanfranchi AL, Luque JL, Haimovici M, Timi JT. Are different parasite guilds of Pagrus pagrus equally suitable sources of information on host zoogeography? Parasitol Res. 2018;117(6):1865-75. https://doi.org/gdkjjx.
Saad CDR, Luque JL. Larvas de Anisakidae na musculatura do pargo, Pagrus pagrus, no Estado do Rio de Janeiro, Brasil. Rev Bras Parasitol Vet. 2009;18(Suppl 1):71-3. https://doi.org/c6cznm.
Soares IA, Vieira FM, Luque JL. Parasite community of Pagrus pagrus (Sparidae) from Rio de Janeiro, Brazil: evidence of temporal stability. Rev Bras Parasitol Vet. 2014;23(2):216-23. https://doi.org/f5sj.
Paraguassú AR, Luque JL, Alves DR. Community ecology of the metazoan parasites of red porgy, Pagrus pagrus (L., 1758) (Osteichthyes, Sparidae), from the coastal zone, state of Rio de Janeiro, Brazil. Acta Sci Maringá. 2002;24(2):461-7.
Farias-Rabelo NL, Muniz-e Silva TC, Ferreira-Araujo LR, da Silva-Pinheiro RE, Machado-da Rocha CA. Detection of Anisakidae larvae parasitizing Plagioscion squamosissimus and Pellona castelnaeana in the state of Pará, Brazil. Acta Sci Biol Sci. 2017;39(3):389-95. https://doi.org/f5sn.
Braicovich PE, Timi JT. Parasites as biological tags for stock discrimination of the Brazilian flathead Percophis brasiliensis in the south-west Atlantic. J Fish Biol. 2008;73(3):557-71. https://doi.org/d7mtcb.
Pantoja CS, Borges JN, Santos CP, Luque JL. Molecular and Morphological Characterization of Anisakid Nematode Larvae from the Sandperches Pseudopercis numida and Pinguipes brasilianus (Perciformes: Pinguipedidae) off Brazil. J Parasitol. 2015;101(4):492-9. https://doi.org/f5sq.
Kuraiem BP, Knoff M, Felizardo NN, Gomes DC, Clemente SS. Nematode larvae infecting Priacanthus arenatus Cuvier, 1829 (Pisces: Teleostei) in Brazil. An Acad Bras Cienc. 2016;88(2):857-63. https://doi.org/f5sr.
Timi JT, Lanfranchi AL. The metazoan parasite communities of the Argentinean sandperch Pseudopercis semifasciata (Pisces: Perciformes) and their use to elucidate the stock structure of the host. Parasitology. 2009;136(10):1209-19. https://doi.org/bn5b5z.
Ramallo G, Torres P. Infección por larvas de Contracaecum sp. (Nematoda, Anisakidae) en Salminus maxillosus (Pisces, Characidae) en el embalse de Termas de Río Hondo, Argentina. Bol Chil Parasitol. 1995;50(1-2):21-3.
González MT, Barrientos C, Moreno CA. Biogeographical patterns in endoparasite communities of a marine fish (Sebastes capensis Gmelin) with extended range in the Southern Hemisphere. J Biogeogr. 2006;33(6):1086-95. https://doi.org/dk4n8x.
Hamann MI. Aspectos ecológicos de la relación parasitaria entre larvas de Contracaecum sp. (Nematoda, Anisakidae) y Serrasalmus spilopleura Kner, 1860 (Pisces, Characidae) en poblaciones naturales del nordeste argentino. Bol Chil Parasitol. 1999;54(3-4):1-8. https://doi.org/ck78md.
Mattiucci S, Paggi L, Nascetti G, Portes-Santos C, Costa G, Di Beneditto AP, et al. Genetic markers in the study of Anisakis typica (Diesing, 1860): Larval identification and genetic relationships with other species of Anisakis Dujardin, 1845 (Nematoda: Anisakidae). Syst Parasitol. 2002;51(3):159-70. https://doi.org/dtccwv.
Peña-Rehbein P, De los Ríos-Escalante P. Use of negative binomial distribution to describe the presence of Anisakis in Thyrsites atun. Rev Bras Parasitol Vet. 2012;21(1):78-80. https://doi.org/f5sw.
Oliva ME. Metazoan parasites of the jack mackerel Trachurus murphyi (Teleostei, Carangidae) in a latitudinal gradient from South America (Chile and Peru). Parasite. 1999;6(3):223-30. https://doi.org/f5sx.
Novo-Borges J, Gulla-Cunha LF, Carneiro-Santos HL, Monteiro-Neto C, Portes-Santos C. Morphological and molecular diagnosis of anisakid nematode larvae from cutlassfish (Trichiurus lepturus) off the coast of Rio de Janeiro, Brazil. PLoS One. 2012;7(7):e40447. https://doi.org/f5tz.
Braicovich PE, Pantoja C, Pereira AN, Luque JL, Timi JT. Parasites of the Brazilian flathead Percophis brasiliensis reflect West Atlantic biogeographic regions. Parasitology. 2017;144(2):169-78. https://doi.org/f9v5zp.
Andrade-Porto SM, Cárdenas MQ, Martins ML, Oliveira JKQ, Pereira JN, Araujo CSO De, et al. First record of larvae of Hysterothylacium (Nematoda: Anisakidae) with zoonotic potential in the pirarucu Arapaima gigas (Osteichthyes: Arapaimidae) from South America. Braz J Biol. 2015;75(4):790-5. https://doi.org/f8jbw7.
Torres P, Andrade P, Silva R. On a New Species of Hysterothylacium (Nematoda: Anisakidae) from Cauque mauleanum (Pisces: Atherinidae) by Brightfield and Scanning Electron Microscopy. Mem Inst Oswaldo Cruz. 1998;93(6):745-52. https://doi.org/ddz8nm.
Maniscalchi-Badaoui MT, Lemus-Espinoza D, Marcano Y, Nounou E, Zacarías M, Narváez N. Larvas Anisakidae en peces del género Mugil comercializados en mercados de la región costera nor-oriental e insular de Venezuela. Saber. 2015;27(1):30-8.
Ruiz L, Vallejo A. Parámetros de infección por nematodos de la familia Anisakidae que parasitan la lisa (Mugil incilis) en la Bahía de Cartagena (Caribe colombiano). Intropica. 2013;8(53):53-60.
Bicudo AJA, Tavares LER, Luque JL. Anisakidae larvae (Nematoda: Ascaridoidea) parasites of the bluewing searobin Prionotus punctatus (Bloch, 1793) (Osteichthyes: Triglidae) from the coastal zone of the State of Rio de Janeiro, Brazil. Rev Bras Parasitol Vet. 2005;14(3):109-18.
Knoff M, Felizardo NN, Iñiguez AM, Maldonado A, Torres EJL, Pinto RM, et al. Genetic and morphological characterisation of a new species of the genus Hysterothylacium (Nematoda) from Paralichthys isosceles Jordan, 1890 (Pisces : Teleostei) of the Neotropical Region, state of Rio de Janeiro, Brazil. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2012;107(2):186-93. https://doi.org/f5t6.
Castellanos-Garzón JA. Nematodos anisákidos en peces de consumo y prevalencia de anticuerpos anti-Anisakis en una población de Colombia. Cali: Universidad del Valle; 2018.
Castellanos JA, Tangua AR, Mercado R, Salazar L. First reporting of Anisakis sp. in the Armed Snook fish (Centropomus armatus) caught and commercialized in Buenaventura, Colombia. Infectio. 2018;22(3):136-40. https://doi.org/f5t7.
Dimensions
PlumX
Visitas a la página del resumen del artículo
Descargas
Cómo citar
Licencia
Derechos de autor 2020 Revista de la Facultad de Medicina
Esta obra está bajo una licencia Creative Commons Reconocimiento 3.0 Unported.
-
